شناسایی گونه‌های گرمادوست کمپیلوباکتر جدا شده از سگ‌های مبتلا به اسهال ارجاع شده به بیمارستان‌های دامپزشکی در ایلورین، ایالت کوارا، نیجریه

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: کمپیلوباکتر یکی از عوامل اصلی گاستروانتریت باکتریایی در سطح جهانی است و حیوانات خانگی مخازن مهمی برای عفونت‌های انسانی محسوب می‌شوند. هدف: این مطالعه با هدف شناسایی و توصیف گونه‌های گرمادوست کمپیلوباکتر از سگ‌های مبتلا به اسهال در بیمارستان‌های اصلی دامپزشکی ایلورین، نیجریه انجام شد. روش کار: در یک مطالعه مقطعی، 120 نمونه مدفوع از سگ‌های مبتلا به اسهال که بین اسفند 1400 تا آذر 1401 به بیمارستان‌های دامپزشکی منتخب ارجاع شده بودند، جمع‌آوری شد. کمپیلوباکتر با استفاده از روش‌های استاندارد باکتریولوژی جداسازی و شناسایی شد. زیرمجموعه‌ای از جدایه‌ها با هدف قرار دادن ژن 16S rRNA توصیف شدند و تمامی جدایه‌ها تحت آزمون حساسیت ضد میکروبی قرار گرفتند. نتایج: 13 نمونه (8/10%) از نظر کمپیلوباکتر مثبت بودند. میزان جداسازی کمپیلوباکتر از سگ‌های نر (5/2%) کمتر از سگ‌های ماده (3/8%) بود، اگرچه این تفاوت از نظر آماری معنی‌دار نبود (P>0.05). در مقابل، میزان جداسازی در فصل بارانی (2/9%) به طور معنی‌داری بیشتر از فصل خشک (7/1%) بود .(P<0.05) جدایه‌ها روابط تکاملی با کمپیلوباکتر کولی (n=2) و کمپیلوباکتر ژژونی (n=1) نشان دادند. جدایه‌ها پروفایل‌های مقاومت متفاوتی را نشان دادند به طوری که 3/92% مقاومت به آمپی‌سیلین و نالیدیکسیک اسید و 6/84% مقاومت به تتراسایکلین داشتند. کمترین میزان مقاومت (7/7%) نسبت به کلرامفنیکل مشاهده شد و 2/46% از جدایه‌ها فنوتیپ‌های مقاومت چنددارویی (MDR) را نشان دادند. نتیجه‌گیری: این مطالعه برای اولین بار در ایلورین، ایالت کوارا، گزارش‌دهنده جدایه‌های کمپیلوباکتر کولی و کمپیلوباکتر ژژونی از سگ‌ها بوده و الگوهای مقاومت ضد میکروبی جدایه‌ها را برجسته می‌سازد. حضور گونه‌های مقاوم به ضد میکروب کمپیلوباکتر در سگ‌ها، با توجه به پتانسیل مشترک بودن این ارگانیسم بین انسان و دام، لزوم پایش مستمر را می‌طلبد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات

مراجع

Acke, E (2018). Campylobacteriosis in dogs and cats: a review. N. Z. Vet. J., 45: 1-23. https://doi.org/10.1080/00480169. 2018.1475268.
Ahmed, OA; Ameh, JA; Abubakar, MB and Raufu, IA (2025). Campylobacteriosis in Africa: A neglected demon. Microbe. 7: 100409. https://doi.org/10.1016/j.microb.2025. 100409.
Ahmed, I; Verma, AK and Kumar, A (2018). Prevalence, associated risk factors and antimicrobial susceptibility pattern of Campylobacter species among dogs attending veterinary practices at Veterinary University, Mathura, India. Vet. Anim. Sci., 6: 6-11. https://doi.org/10.1016/j. vas.2018.07.001.
Akeem, AO; Mamman, PH; Raji, MA; Kwanashie, CN; Raufu, IA and Aremu, A (2017). Distribution of virulence genes in Salmonella serovars isolated from poultry farms in Kwara State, Nigeria. Ceylon J. Sci., 46: 69-76.
Amandine, T; Valérie, R; Queguiner, M; Chemal, M and Katell, R (2020). Dogs and cats: reservoirs for highly diverse Campylobacter jejuni and a potential source of human exposure. Animals. 10: 838.
Andrzejewska, M; Szczepańska, B; Klawe, JJ; Śpica, D and Chudzińska, M (2013). Prevalence of Campylobacter jejuni and Campylobacter coli species in cats and dogs from Bydgoszcz (Poland) region. Pol. J. Vet. Sci., 16: 115-120. https://doi.org/10.2478/pjvs-2013-0016.
Bojanic, K; Midwinter, AC; Marshall, JC; Rogers, LE; Biggs, PJ and Acke, E (2016). Isolation of Campylobacter spp. from client-owned dogs and cats, and retail raw meat pet food in the Manawatu, New Zealand. Zoonoses Public Hlth., 9: 1-12. https://doi.org/10.1111/zph.12323.
Campagnolo, ER; Philipp, LM; Long, JM and Hanshaw, NL (2018). Pet-associated campylobacteriosis: a persisting public health concern. Zoonoses Public Hlth., 65: 304-11.
Carbonero, A; Torralbo, A; Borge, C; Garcia-Bocanegra, I; Arenas, A and Perea, A (2012). Campylobacter spp., C. jejuni and C. upsaliensis infection-associated factors in healthy and ill dogs from clinics in Cordoba, Spain. Screening tests for antimicrobial susceptibility. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis., 35: 505-512.
Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) (2020). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. 30th Edn., CLSI Supplement M100. Wayne, PA, USA.
Everest, PH (1992). The pathogenesis of campylobacter diarrhoea. Ph.D. Thesis, University of Leicester, Leicester, UK.
Facciolà, A; Riso, R; Avventuroso, E; Visalli, G; Delia, SA and Laganà, P (2017). Campylobacter: from microbiology to prevention. J. Prev. Med. Hyg., 58: E79-E92.
Fitzgerald, C (2015). Campylobacter. Clin. Lab. Med., 35: 289-298. https://doi.org/10.1016/j.cll.2015.03.001.
Ghunaim, H; Behnke, JM; Aigha, I; Sharma, A and Doiphode, SH (2015). Analysis of resistance to antimicrobials and presence of virulence/stress response genes in Campylobacter isolates from patients with severe diarrhoea. PloS One. 10: e0119268. https://doi.org/10.1371/ journal.pone.0119268.
Giacomelli, M; Follador, N; Coppola, LM; Martini, M and Piccirillo, A (2015). Survey of Campylobacter spp. in owned and unowned dogs and cats in Northern Italy. Vet. J., 204: 333-337. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2015.03.017.
Goni, MD; Muhammad, IJ; Goje, M; Abatcha, MG; Bitrus, AA and Abbas, MA (2017). Campylobacter in dogs and cats; Its detection and public health significance: A review. Adv. Anim. Vet. Sci., 5: 239-248.
Jribi, H; Hanen, S; Siala, M; Salma, S; Asma, G; Salma, H; Lucie, B; Feriel, M; Francis, M and Radhouane, G (2017). Isolation and identification of Campylobacter spp. from poultry and poultry by-products in Tunisia by conventional culture method and multiplex real-time PCR. J. Food Prot., 80: 1623-1627.
Kaakoush, NO; Castaño-rodríguez, N; Mitchell, HM and Ming, S (2015). Global epidemiology of Campylobacter infection. Clin. Microbiol. Rev., 28: 687-720. https://doi. org/10.1128/CMR.00006-15.
Karshima, S and Bobbo, A (2016). Isolation and PCR characterisation of thermophilic Campylobacter species in dogs presented to selected veterinary clinics in jos, Nigeria. Alex. J. Vet. Sci., 50: 70-77. https://doi.org/10.5455/ajvs. 221754.
Kashoma, IP; Kassem, II; John, J; Kessy, BM; Gebreyes, W; Kazwala, RR and Rajashekara, G (2016). Prevalence and antimicrobial resistance of Campylobacter isolated from dressed beef carcasses and raw milk in Tanzania. Microb. Drug Resist., 22: 40-52. https://doi.org/10.1089/ mdr.2015.0079.
Leahy, AM; Cummings, KJ; Rodriguez-Rivera, LD; Hamer, SA and Lawhon, SD (2017). Faecal Campylobacter shedding among dogs in animal shelters across Texas. Zoonoses Public Hlth., 64: 623-627. https://doi.org/10.1111/zph.12356.
Liu, F; Lee, SA; Xue, J; Riordan, SM and Zhang, L (2022). Global epidemiology of campylobacteriosis and the impact of COVID-19. Front. Cell. Infect. Microbiol., 12: 979055. https://doi.org/10.3389/fcimb.2022.979055.
Mahmoud, AS; Ahmed, OA; Philip, TB; Raji, AM; Daodu, OB; Olorunshola, ID and Raufu, AI (2022). Phenotypic characterization of Campylobacter species from ruminants slaughtered at major abattoirs in Ilorin, Kwara State, Nigeria. Food Prot. Trends, 42: 202-209.
National Population Commission (NPC) [Nigeria] and ICF International (2014). Nigeria demographic and health survey 2013. Abuja, Nigeria and Rockville, Maryland,
USA: NPC and ICF International.
Olabode, AD and Oluwafemi G (2016). Developing an education-based management system using geo-spatial analysis for selected secondary schools in Ilorin West Local Government Area, Kwara State, Nigeria. Int. J. Sci. Technol. Educ. Res., 7: 25-34. https://doi.org/10.5897/ IJSTER2016.0355.
Paul, JR and Trevor, JT (1989). Rapid identification of Campylobacter species using oligonucleotide probes to 16S ribosomal RNA. Mol. Cell. Probes, 3: 133-142.
Peter, OM; Ikejiofor, OK; Abdullahi, J and Waziri, A (2020). Prevalence of Campylobacter Species in dogs in Bassa, Plateau State, Nigeria. Ann. Microbiol. Infect. Dis., 2: 21-25.
Platts-Mills, JA; Liu, J; Gratz, J; Mduma, E; Amour, C; Swai, N; Taniuchi, M; Begum, S; Yori, PP; Tilley, DH; Lee, G; Shen, Z; Whary, MT; Fox, JG; McGrath, M; Kosek, M; Haque, R and Houpt, ER (2014). Detection of Campylobacter in stool and determination of significance by culture, enzyme immunoassay, and PCR in developing countries. J. Clin. Microbiol., 52: 1074-1080. https://doi. org/10.1128/JCM.02935-13.
Rahimi, E; Alipoor-Amroabadi, M and Khamesipour, F (2017). Investigation of prevalence of thermotolerant Campylobacter spp. in livestock faeces. Can. J. Anim. Sci., 97: 207-213. https://doi.org/dx.doi.org/10.1139/ cjas-2015-0166.
Salihu, MD; Magaji, AA; Abdulkadir, JU and Kolawale, A (2010). Survey of thermophilic Campylobacter species in cats and dogs in north-western Nigeria. Vet. Ital., 46: 425-430.
Skarp, CPA; Akinrinade, O; Nilsson, AJE; Ellström, P; Myllykangas, S and Rautelin, H (2015). Comparative genomics and genome biology of invasive Campylobacter jejuni. Sci. Rep., 5: 1-10. https://doi.org/10.1038/ srep17300.
Torkan, S; Vazirian, B; Khamesipour, F and Gabriel, O (2018). Prevalence of thermotolerant Campylobacter species in dogs and cats in Iran. Vet. Med. Sci., 4: 296-303. https://doi.org/10.1002/vms3.117.
Usman, A (2020). Antibiotic use among hospitalized patients in northern Nigeria: a multicenter point prevalence survey. BMC Infect. Dis., 20: 86-95. https://doi.org/10.1186/ s12879-020-4815-4.
Wagner, J; Short, K; Catto-Smith, AG; Cameron, DJS; Bishop, RF and Kirkwood, CD (2008). Identification and characterisation of Pseudomonas 16S ribosomal DNA from ileal biopsies of children with Crohn’s disease. PLoS One. 3: e3578. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0003578.
Waje, T; Iliyasu, C; Yaki, LM and Auta, IK (2024). Occurrence of genetic diversity, virulence, and resistance genes among Campylobacter species in Nigeria: A review. Curr. Clin. Microbio. Rep., 11: 35-42.

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار