خصوصیات و انجماد منی سه گونه از پرندگان شکاری

نوع مقاله : مقاله کوتاه

نویسندگان

چکیده

پیشینه: تکنیک‌های کمک باروری در پرندگان به حفاظت و کاربرد پایدار بسیاری از گونه‌ها کمک کرده است. یکی از این تکنیک‌ها نگهداری در انجماد مایع منی است که به دنبال کشف مواد محافظ برودتی مناسب امکان پذیر شده است. هدف: این مطالعه با هدف بررسی ویژگی‌های منی تازه و پس از ذوب گونه‌های مختلف پرندگان شکاری انجام شد. روش کار: گونه‌های زیر وارد مطالعه شدند: شاهین دم قرمز  (Buteo jamaicensis) سه عدد، عقاب طلایی (Aquila chrysaetos) سه عدد، و شاهین هریس (Parabuteo unicinctus) سه عدد. بیست و پنج نمونه منی اخذ شد. برای هر گونه درصد تحرک، زنده ماندن و مورفولوژی اسپرم مورد بررسی قرار گرفت. نتایج: تفاوت‌های مشهودی در بین نمونه‌های سه گونه به ویژه در طول اسپرم و نیز میان پارامترهای قبل و پس از ذوب یک گونه تفاوت‌های قابل توجهی مشاهده شد به طوری که تحرک اسپرم تقریبا 40% پس از ذوب کاهش یافت. علاوه بر این، نشان داده شد که انجماد اسپرم گونه‌های مورد مطالعه با استفاده از پروتکل انجمادی یکسان امکان پذیر است. نتیجه‌گیری: این مطالعه نشان داد که ویژگی‌های اسپرم می‌تواند بر پارامترهای به دست آمده در حین نگهداری در شرایط آزمایشگاهی آن‌ها چه در حالت تازه و چه حالت پس از ذوب تاثیر بگذارد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات

مراجع

Asano, A and Tajima, A (2017). Development and preservation of avian sperm. Adv. Exp. Med. Biol., 1001: 59-73. https://doi.org/10.1007/978-981-10-3975-1_4.
Bailey, TA and Lierz, M (2017). Veterinary aspects of bird of prey reproduction. Vet. Clin. North Am: Exot. Anim. Prac., 20: 455-483. https://doi.org/10.1016/j.cvex.2016.11.008.
Blanco, JM; Gee, G; Wildt, DE and Donoghue, AM (2000). Species variation in osmotic, cryoprotectant, and cooling rate tolerance in poultry, eagle, and peregrine falcon spermatozoa. Biol. Reprod., 63: 1164-1171. https://doi.org/ 10.1095/biolreprod63.4.1164.
Blanco, JM; Long, JA; Gee, G; Wildt, DE and Donoghue, AM (2010). Comparative cryopreservation of avian spermatozoa: Benefits of non-permeating osmoprotectants and ATP on turkey and crane sperm cryosurvival. Anim. Reprod. Sci., 123: 242-248. https://doi.org/10.1016/j. anireprosci.2010.12.005.
Blanco, J; Wildt, D; Höfle, U; Voelker, W and Donoghue, AM (2009). Implementing artificial insemination as an effective tool for ex situ conservation of endangered avian species. Theriogenology. 71: 200-213. https://doi.org/10. 1016/j.theriogenology.2008.09.019.
Blas, J; López, L; Tanferna, A; Sergio, F and Hiraldo, F (2011). Reproductive endocrinology of wild, long-lived raptors. Gen. Comp. Endocrinol., 168: 22-28. https://doi. org/10.1016/j.ygcen.2010.03.020.
Boyd, L; Boyd, S and Dobler, C (1977). Reproduction of praire falcons by artificial insemination. J. Wild. Man., 41: 266-271. https://doi.org/10.2307/3800603.
Briskie, JV and Montgomerie, R (1992). Sperm size and sperm competition in birds. Proced. Biol. Sci., 247: 89-95. https://doi.org/10.1098/rspb.1992.0013.
Cardoso, B; Sánchez-Ajofrín, I; Castaño, C; García-Álvarez, O; Esteso, MC; Maroto-Morales, A; Iniesta-Cuerda, M; Garde, JJ; Santiago-Moreno, J and Soler, AJ (2020). Optimization of sperm cryopreservation protocol for peregrine Falcon (Falco peregrinus). Animals (Basel), 10: 1-11. https://doi.org/10.3390/ani10040691.
Dogliero, M; Rota, A; Lofiego, R; Mauthe, V; Degerfeld, M and Quaranta, G (2016). Semen evaluation in four autochthonous wild raptor species using computer-aided sperm analyzer. Theriogenology. 85: 1113-1117. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2015.11.023.
Dogliero, A; Rota, A; Lofiego, R; Von Degerfeld, MM and Quaranta, G (2015). Semen evaluation in four autochthonous wild raptor species using computer-aided sperm analyzer. Theriogenology. 85: 1113-1117. http://dx.doi.org/10.1016/j.theriogenology.2015.11.023.
Etches, JR (1996). Artificial insemination. In: Reproduction in poultry. Cab International, Eds. 1st Edn., Ontario Canada, PP: 234-261.
Fischer, DH; Failing, SK; Meinecke-Tillmann, S; Wehrend, A and Lierz, M (2020). Viability assessment of spermatozoa in large falcons (Falco spp.) using various staining protocols. Reprod. Dom. Anim., 55: 1383-1392. https://doi.org/10.1111/rda.13785.
Froman, DP (2013). Short-term preservation of fowl sperm in buffered potassium chloride. Poult. Sci., 92: 1336-1342. https://doi.org/10.3382/ps.2012-02847.
Gee, GF; Morrell, CA; Franson, JC and Pattee, OH (1993). Criopreservation of american kestrel semen with dimethylsulfoxide. J. Rap. Res., 27: 21-25. https://sora. unm.edu/sites/default/files/journals/jrr/v027n01/p00021-p00025.pdf.
Herbert, JD; Coulson, JO and Coulson, TD (2011). Quantification of tissue uric acid levels in a Harris’s hawk with visceral gout. Avian Dis., 55: 513-515. https://doi.org/ 10.1637/9676-020211-Case.1.
Herrera, JA; Calderón, G; Guzmán, A; Vargas, AK; Ávalos, A and Rosales, AM (2017). Evaluation of two diluents for the storage of fresh and cryopreserved semen of Harris hawk (Parabuteo unicinctus). Aust. J. Vet. Sci., 49: 39-43. http://dx.doi.org/10.4067/s0719-813220170001 00039.
Herrera, JA; Quintana, JA; Lopez, MA; Betancourt, M and Fierro, R (2005). Individual cryopreservation with dimethyl sulfoxide and polyvinylpyrrolidone of ejaculates and pooled semen of three avian species. Arch. Androl., 51: 353-360. https://doi.org/10.1080/014850190944401.
Herrera-Barragán, JA; Landa-García, SS; Pérez-Rivero, JJ; Huitrón-Rodríguez, JM; León-Galván, MÁ; Guzmán-Sánchez, A and Reyes-Mendoza, CS (2021). Obtaining ejaculates through operant conditioning of the Golden Eagle (Aquila chrysaetos). Ind. J. Anim. Res., 57: 836-840. https://doi.org/10.18805/IJAR.B-1342.
Kuzlu, M and Taskin, A (2017). The effect of different extenders on the sperm motility and viability of frozen Turkey semen. Ind. J. Anim. Res., 51: 235-241. https://doi.org/10.18805/ijar.v0iOF.6825.
Long, JA; Purdy, PH; Zuidberg, K; Hiemstra, SJ; Velleman, SG and Woelders, H (2014). Cryopreservation of turkey semen: Effect of breeding line and freezing method on post-thaw sperm quality, fertilization, and hatching. Cryobiology. 68: 371-378. https://doi.org/10. 1016/j.cryobiol.2014.04.003.
Nazeri, E; Niasari-Naslaji, A; Ghasemzadeh-Nava, H and Panahi, F (2023). The effect of varying concentrations of chicken plasma egg yolk and glycerol on the viability of canine sperm following short and long-term preservation. Iran. J. Vet. Res., 24: 6-13. https://doi.org/10.22099/ijvr. 2022.43403.6339.
PREP (2012). Recovery program for the populations of the golden eagle (Aquila chrysaetos canadensis) and their habitat in Mexico, Secretariat of Environment and Natural Resources; Mexico.
Santiago, MJ; Castaño, C; Toledano, DA; Coloma, MA; López, SA; Prieto, T and Campo, LJ (2011). Semen cryopreservation for the creation of a Spanish poultry breeds cryobank: Optimization freezing rate and equilibrium time. Poult. Sci., 90: 2047-2053. https://doi.org/10.3382/ps.2011-01355.
Sasanami, T; Matsuzaki, M; Mizushima, S and Hiyam, G (2013). Review-Sperm storage in the female reproductive tract in birds. J. Reprod. Develop., 59: 1-10. https://doi.org/10.126/jrd.2013-038.
Sexton, TJ and Giesen, AF (1983). Beltsville poultry semen extender: 7. Comparison of commercial diluents for holding turkey semen six hours at 15 C. Poult. Sci., 62: 379-381. https://doi.org/10.3382/ps.0620379.
Umapathy, GS; Sontakke, A; Reddy, S; Ahmed, S and Shivaji, S (2005). Semen characteristics of the captive Indian white-backed vulture (Gyps bengalensis). Biol. Reprod., 73: 1039-1045. https://doi.org/10.1095/biolreprod. 105.043430.
Villaverde-Morcillo, S; García-Sánchez, R; Castaño, C; Rodríguez, E; González, F; Esteso, M and Santiago-Moreno, J (2015). Characterization of natural ejaculates and sperm cryopreservation in a golden eagle (Aquila chrysaetos). J. Zool. Wildl. Med., 46: 335-338. https://doi.org/10.1638/2013-0293R1.1.
Villaverde-Morcillo, S; Soler, AJ; Esteso, MC; Castaño, C; Miñano-Berna, A; González, F and Santiago-Moreno, J (2017). Immature and mature sperm morphometry in fresh and frozen-thawed falcon ejaculates. Theriogenology. 98: 94-100. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2017.04. 051.

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار