انتشار ویروس مدی-ویسنا در اندام‌های مختلف نشخوارکنندگان کوچک به طور خود به خودی مبتلا شده در هند

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: مدی-ویسنا (MV) یک بیماری لنتی ویروسی نشخوارکننده کوچک (SRLV) است که گوسفند و بز را تحت تاثیر قرار می‌دهد و باعث تغییرات پاتولوژیک در اندام‌های مختلف از جمله ریه‌ها، غدد لنفاوی ریوی، غدد پستانی، مفاصل و سیستم عصبی مرکزی می‌شود. هدف: مطالعه حاضر به منظور شناسایی اسید نوکلئیک ویروس مدی-ویسنا (MVV) و آنتی ژن p28 MVV در اندام‌های مختلف گوسفند و بز مبتلا شده انجام شد. روش کار: در مجموع 657 نمونه (169 خون، 136 ریه، 96 غدد لنفاوی ریوی، 74 مغز، 54 غده پستانی، 78 مفاصل، و 50 طحال) از نظر وجود اسید نوکلئیک MVV با استفاده از روش Nested PCR غربالگری شدند. نمونه‌های سرم از نظر آنتی‌بادی SRLV توسط ceLISA غربالگری شدند. ایمونولوژی MVV با استفاده از آنتی بادی پلی کلونال علیه آنتی ژن p28 توسط ایمونوهیستوشیمی در ریه‌ها، غدد لنفاوی، غدد پستانی و بافت‌های مفصلی نشان داده شد. نتایج: از 657 نمونه، 7/10% (657/70) نمونه برای MVV مثبت بودند. در بین اندام‌های مختلف، ریه‌ها (7/25%) بالاترین میزان آلودگی را نشان دادند و سپس غدد پستانی (8/14%)، خون (5/9%)، بافت‌های مفصلی (7/7%)، مغز (4/5%)، و غدد لنفاوی ریوی (1%) قرار گرفتند. آنتی بادی SRLV در 2/29% از نمونه‌های سرم گوسفند و بز توسط cELISA شناسایی شد. تجمع پروتئینP28 MVV در ریه‌ها، غدد لنفاوی، غدد پستانی و بافت‌های مفصلی مشاهده شد. با این حال، نشانه مثبت آنتی ژن P28 MVV در بافت‌های مغزی یافت نشد. نتیجه‌گیری: بالاترین میزان مثبت MVV در بافت‌های ریه نشان دهنده تمایل بیشتر ویروس در بافت ریوی است.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Barquero, N; Arjona, A; Domenech, A; Toural, C; de Las Heras, A; Fernández-Garayzabal, JF; Ruiz-Santa Quiteria, JA and Gomez-Lucia, E (2011). Diagnostic performance of PCR and ELISA on blood and milk samples and serological survey for small ruminant lentiviruses in central Spain. Vet. Rec., 168: 20. https://doi.org/10.1136/vr.c4951.
Benavides, J; García-Pariente, C; Gelmetti, D; Fuertes, M; Ferreras, MC; García-Marín, JF and Pérez, V (2006). Effects of fixative type and fixation time on the detection of Maedi Visna virus by PCR and immunohistochemistry in paraffin-embedded ovine lung samples. J. Virol. Meth., 137: 317-324. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2006.07. 009.
Blacklaws, BA (2012). Small ruminant lentiviruses: immunopathogenesis of visna-maedi and caprine arthritis and encephalitis virus. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis., 35: 259-269. https://doi.org/10.1016/j.cimid.2011.12. 003.
Carrozza, ML; Mazzei, M; Bandecchi, P; Arispici, M and Tolari, F (2003). In situ PCR-associated immuno-histochemistry identifies cell types harbouring the Maedi-Visna virus genome in tissue sections of sheep infected naturally. J. Virologic. Meth., 107: 121-127. https://doi.org/ 10.1016/S0166-0934(02)00208-2.
Colitti, B; Coradduzza, E; Puggioni, G; Capucchio, MT; Reina, R; Bertolitti L and Rosati S (2019). A new approach for small ruminant lentivirus full genome characterization revealed the circulation of divergent strains. PLoS One. 14(2): e0212585. https://doi.org/10. 1371/journal.pone.0212585.
Dar, JA (2017). Monitoring and pathology of viral pneumonias with special reference to retroviral infections in sheep and goats. MVSc Thesis, ICAR-IVRI Deemed University, Izatnagar, Bareilly, India.
De Andres, D; Klein, D and Watt, NJ (2005). Diagnostic tests for small ruminant lentiviruses. Vet. Microbiol., 107: 49-62. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2005.01.012.
Gayo, E; Cuteri, V; Polledo, L; Rossi, G; GarciaMarin, J and Preziuso, S (2018). Genetic characterization and phylogenetic analysis of small ruminant lentiviruses detected in spanish Assaf sheep with different mammary lesions. Virus. 10(6): 315. https://doi.org/10.3390/ v10060315.
Gomez-Lucia, E; Barquero, N and Domenech, A (2018). Maedi-Visna: current perspectives. Vet. Med. Res. Rep., 9: 11. https://doi.org/10.2147/VMRR.S136705.
Herrmann-Hoesing, LM; Noh, SM; Snekvik, KR; White, SN; Schneider, DA; Truscott, T and Knowles, DP (2010). Ovine progressive pneumonia virus capsid antigen as found in CD163-and CD172a-positive alveolar macrophages of persistently infected sheep. Vet. Path., 47: 518-528. https://doi.org/10.1177/0300985809359605.
International Committee on Taxonomy of Viruses (2022). Current ICTV taxonomy release. https://ictv.global/ taxonomy.
Kumar, K; Kumar, P; Sindhoora, K; Valecha, S; Kumar, R; Singh, V and Singh, R (2022). Detection and immune cell response of natural maedi visna virus (MVV) infection in Indian sheep and goats. Microb. Pathog., 165: 105467. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2022.105467.
Larruskain, A and Jugo, BM (2013). Retroviral infections in sheep and goats: Small ruminant lentiviruses and host interaction. Viruses. 5: 2043-2061. https://doi.org/10.3390/ v5082043.
Lujan, L; García, JM; de Luco Fernández, D; Vargas, A and Badiola, JJ (1991). Pathological changes in the lungs and mammary glands of sheep and their relationship with maedi-visna infection. Vet. Rec., 129: 51-54. https://doi. org/10.1136/vr.129.3.51.
Mishra, S; Kumar, P; Dar, JA; George, N; Singh, R; Singh, V and Singh, R (2020). Detection and prevalence of small ruminant lentiviral (SRLV) infections in Indian sheep and goats. Indian J. Vet. Path., 44: 207-211. https://doi.org/10. 5958/0973-970X.2020.00043.7.
Peterhans, E; Greenland, T; Badiola, J; Harkiss, G; Bertoni, G; Amorena, B; Eliaszewicz, M; Juste, R; Krassnig, R; Lafont, JP and Lenihan, P (2004). Routes
of transmission and consequences of small ruminant lentiviruses (SRLVs) infection and eradication schemes. Vet. Res., 35: 257-274.
Pinczowski, P; Sanjose, L; Gimeno, M; Crespo, H; Glaria, I and Amorena, B (2017). Small ruminant lentiviruses in sheep: Pathology and tropism of 2 strains using the bone marrow route. Vet. Pathol., 54: 413-424. https://doi.org/10. 1177/0300985816688742.
Preziuso, S; Magi, GE; Mari, S and Renzoni, G (2013). Detection of visna maedi virus in mesenteric lymph nodes and in other lymphoid tissues of sheep three years after respiratory infection. Vet. Med., 58: 359-363.
Preziuso, S; Taccini, E; Rossi, G; Renzoni, G and Braca, G (2003). Experimental maedi visna virus infection in sheep: a morphological, immunohistochemical and PCR study after three years of infection. Euro. J. Histo. Chem., 47: 373-378. https://doi.org/10.4081/849.
Sigurdsson, B and Palsson, PA (1954). Visna of sheep. A slow demyelinating infection. Brit. Exp. Pathol., 39: 519-528.
Valecha, S; Roopa, N; Yadav, HS; Singh, R; Singh, V and Kumar, P (2023). Co-infection of maedi visna virus (MVV) with jaagsiekte sheep retrovirus (JSRV) and mycoplasma in Indian sheep and goats. Indian J. Vet. Pathol., 47: 13-17.
Vaught, JB and Henderson, MK (2011). Biological sample collection, processing, storage and information management. IARC Sci. Publ., 163: 23-42.
Yadav, HS; Neha; Vinay Kumar, SD; Singh, CP; Jana, C; Singh, V and Kumar, P (2024a). Mixed infection of ovine pulmonary adenocarcinoma and maedi in sheep - A case study. Indian J. Vet. Pathol., 48: 196-198.
Yadav, HS; Neha; Vinay Kumar, SD; Singh, V and Kumar, P (2024b). Detection of maedi visna virus (MVV) in milk samples of Indian goats. Internat. J. Adv. Biochem. Res., SP-8(1): 143-145.