اولین ثبت هتراکیس گالیناروم به عنوان عامل تیفلیت ندولار کشنده در قرقاول طلایی (Chrysolophus pictus) در هند

نوع مقاله : گزارش علمی

نویسندگان

چکیده

پیشینه: هتراکیدوزیس یکی از شایع‌ترین بیماری‌های انگلی در پرندگان است که سکوم انواع پرندگان وحشی و اهلی به این نماتدها آلوده است. در قرقاول‌ها، تیفلیت ندولار یک بیماری کشنده است که عمدتا در اثر عفونت با هتراکیس ایزولونچ به تنهایی یا همراه با هتراکیس گالیناروم ایجاد می‌شود. هتراکیس گالیناروم مدت‌ها است که به عنوان آلوده کننده پرندگان با بیماری‌زایی کم شناخته شده است و تنها چند مورد مرگبار قبلا گزارش شده است. توصیف بیمار: این مقاله یک مورد تیفلیت ندولار کشنده ناشی از هتراکیس گالیناروم را در یک جفت نر و ماده قرقاول طلایی بالغ (Chrysolophus pictus) از باغ جانورشناسی در اوتار پرادش، هند توصیف می‌کند. یافته‌ها/درمان و نتیجه درمان: سکوم دارای ندول‌های سروزی و مخاطی متعددی بود که اکثر آن‌ها حاوی مراحل مختلفی از انگل‌های قرار گرفته در مرکز نودول‌ها به همراه اشکال آزاد در محتویات سکوم بود. از نظر هیستوپاتولوژیکی، این ندول‌ها به طور کلی توسط گرانولوم‌هایی با مرکزیت بقایای انگل نکروزه همراه با واکنش بافتی هیپرپلاستیک فیبری فعال مشخص شدند. بر اساس مورفولوژی و PCR ناحیه جداکننده رونویسی شده داخلی  (ITS) ITS1-5.8 rRNA-ITS2 مختص نماتد، هتراکیس گالیناروم شناسایی شد. حضور هتراکیس گالیناروم با تعیین توالی ITS و سپس تجزیه و تحلیل فیلوژنتیک تایید شد. با توجه به آخرین اطلاعات نویسنده، این اولین مورد از هتراکیس گالیناروم است که با تیفلیت ندولار در قرقاول‌ها در هند مرتبط است. نتیجه‌گیری: یافته‌های ما تایید می‌کند که علاوه بر هتراکیس ایزولونچ، هتراکیس گالیناروم نیز می‌تواند باعث ایجاد تیفلیت ندولار شدید کشنده در قرقاول شود.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Amundson, CL; Traub, NJ; Smith-Herron, AJ and Flint, PL (2016). Helminth community structure in two species of arctic-breeding waterfowl. Int. J. Parasitol. Parasites Wildl., 5: 263-272.
Ara, I; Khan, H; Syed, T and Bhat, B (2021). Prevalence and seasonal dynamics of gastrointestinal nematodes of domestic fowls (Gallus gallus domesticus) in Kashmir, India. J. Adv. Vet. Anim. Res., 8: 448-453.
Balaguer, L; Romano, J; Nieto, JM and Fernandez, JP (1992). Nodular typhlitis of pheasants caused by Heterakis isolonche: further evidence of a neoplastic nature. J. Zoo Wildl. Med., 23: 249-253.
Bobrek, K; Hildebrand, J; Urbanowicz, J and Gaweł, A (2019). Molecular identification and phylogenetic analysis of Heterakis dispar isolated from geese. Acta Parasitol., 64: 753-760.
Callinan, RB (1987). Nodular typhlitis in pheasants caused by Heterakis isolonche. Aust. Vet. J., 64: 58-59.
Das, M; Laha, R and Doley, S (2022). Gastrointestinal parasites in backyard chickens of Mid Hill region of Meghalaya. Ind. J. Ani. Sci., 92: 179-182.
Griner, LA; Migaki, G; Penner, LR and McKee Jr, AE (1977). Heterakidosis and nodular granulomas caused by Heterakis isolonche in the ceca of gallinaceous birds. Vet. Pathol., 14: 582-590.
Halajian, A; Kinsella, JM; Mortazavi, P and Abedi, M
(2013). The first report of morbidity and mortality in Golden Pheasant, Chrysolophus pictus, due to a mixed infection of Heterakis gallinarum and H. isolonche in Iran. Turkish J. Vet. Anim. Sci., 37: 611-614.
Himmel, L and Cianciolo, R (2017). Nodular typhlocolitis, heterakiasis, and mesenchymal neoplasia in a ring-necked pheasant (Phasianus colchicus) with immunohistochemical characterization of visceral metastases. J. Vet. Diagn., 29: 561-565.
Kaushik, RK and Deorani, VS (1969). Studies on tissue responses in primary and subsequent infections with Heterakis gallinae in chickens and on the process of formation of caecal nodules. J. Helminthol., 43: 69-78.
Khan, SA; Iqbal, M and Ashraf, SK (1994). Pathological changes associated with Heterakis gallinarum infection in guinea fowl (Numida meleagridis). Int. J. Anim. Sci., 9: 77.
Kumar, S; Stecher, G; Li, M; Knyaz, C and Tamura, K (2018). MEGA X: molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms. Mol. Biol. Evol., 35: 1547.
Lund, EE and Chute, AM (1972). Reciprocal responses of eight species of galliform birds and three parasites: Heterakis gallinarum, Histomonas meleagridis, and Parahistomonas wenrichi. J. Parasitol., 58: 940-945.
Marudhai, T; Thangadurai, R; Sakthivel, V; Chandran, I; Gunasekar, M; Duraisamy, C and Adaikkan, V (2022). Concurrent Heterakis and Capillaria infection in Aseel chicken (Gallus gallus domesticus): Diagnosis, treatment and outcome. Int. J. Livestock Res., 12: 25-29.
Meads, EB and Taylor, PA (1963). Typhlitis in pheasants due to Heterakis gallinae. Can. Vet. J., 4: 56-59.
Mendonca, J (1953). Heterakis isolonche Linstow, 1906 and Heterakis gallinae (Gmelin, 1790), causal agents of warty typhlitis in pheasants at the Federal District Zoo. Mem. Inst. Oswaldo Cruz., 51: 675-687.
Menezes, RC; Tortelly, R; Gomes, DC and Pinto, RM (2003). Nodular typhlitis associated with the nematodes Heterakis gallinarum and Heterakis isolonche in pheasants: frequency and pathology with evidence of neoplasia. Mem. Inst. Oswaldo Cruz., 98: 1011-1016.
Mutalib, AA and Riddell, C (1982). Cecal and hepatic granulomas of unknown etiology in chickens. Avian Dis., 732-740.
Rao, P (1994). Heterakiasis in a golden pheasant (Chrysolophus pictus). Indian Vet. J., 71: 516.
Riddell, C and Gajadhar, A (1988). Cecal and hepatic granulomas in chickens associated with Heterakis gallinarum infection. Avian Dis., 32: 836-838.
Schoch, CL; Ciufo, S; Domrachev, M; Hotton, CL; Kannan, S; Khovanskaya, R; Leipe, D; Mcveigh, R; O’Neill, K; Robbertse, B; Sharma, S; Soussov, V; Sullivan, JP; Sun, L; Turner, S and Karsch-Mizrachi, I (2020). NCBI taxonomy: a comprehensive update on curation, resources and tools. Database (Oxford). doi: 10.1093/database/baaa062.
Tyzzer, EE (1926). Heterakis vesicularis Frölich 1791: a vector of an infectious disease. Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 23: 708-709.
Vijayalingam, TA; Rajesh, NV and Latchumikanthan, A (2020). A report on caecal heterakiasis in a community flock of Guinea fowl in Ramanathapuram district. J. Entomo. Zoo. Stud., 8: 802-805.
Wang, XQ; Lin, RQ; Gao, Y; Cheng, T; Zou, SS; He, Y; Li, GY; Weng, YB and Zhu, XQ (2012). Prevalence of intestinal helminths in domestic goose (Anser domesticus) in Qingyuan, Guangdong Province, China. Afr. J. Microbiol., 6: 6843-6846.