تاثیر غلظت‌های مختلف پلاسمای زرده تخم مرغ خانگی و گلیسرول بر روی زنده مانی اسپرم سگ به دنبال نگهداری کوتاه و بلند مدت

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

1 دانش آموخته دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران

2 گروه مامایی و بیماری‌های تولید مثل، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران

چکیده

پیشینه: پلاسمای زرده تخم مرغ خانگی، به دلیل قابل دسترس بودن و فرآوری آسان می‌تواند جایگزین مناسبی برای زرده تخم مرغ غیر فرآوری شده به شمار رود. هدف: هدف از انجام این مطالعه مقایسه غلظت‌های مختلف پلاسمای زرده تخم مرغ خانگی و گلیسرول بر روی زنده مانی اسپرم سگ متعاقب نگهداری کوتاه و بلند مدت بوده است. روش کار: نمونه اسپرم اخذ شده (7 تکرار از 4 سگ) بلافاصله توسط رقیق کننده تریس حاوی صفر، 20، و 40% پلاسمای زرده مرغ خانگی به همراه 3% گلیسرول به ترتیب رقیق گردید. پس از رسیدن به دمای 4 درجه      سانتی گراد در مدت یک ساعت، هم حجم نمونه رقیق شده، رقیق کننده انجماد حاوی درصدهای مشابه پلاسمای زرده مطابق مرحله اول و میزان صفر و 7% گلیسرول اضافه گردید تا غلظت نهایی گلیسرول به 5/1 و 5% جهت نگهداری کوتاه مدت اسپرم برسد. به منظور نگهداری بلند مدت اسپرم، نمونه‌های رقیق شده با مقادیر مختلف پلاسمای زرده تخم مرغ (صفر، 20، و 40%) به همراه گلیسرول 5% در پایت‌های 5/0 میلی لیتری ذخیره و توسط دستگاه انجماد اسپرم منجمد شدند. پس از یخ گشایی پایت‌ها در 37 درجه سانتی گراد به مدت 30 ثانیه، نمونه‌ها مورد ارزیابی قرار گرفتند. فراسنجه‌های زنده مانی اسپرم شامل: حرکت کل، حرکت پیشرونده مستقیم، یکپارچگی غشاء پلاسمایی و درصد اسپرم‌های زنده پس از نگهداری در شرایط یخچالی و پس از یخ گشایی مورد ارزیابی قرار گرفتند. نتایج: در طول 72 ساعت پس از جمع آوری اسپرم، فراسنجه‌های زنده مانی اسپرم در رقیق کننده تریس حاوی 20 و 40% پلاسمای زرده تخم مرغ به همراه 5/1 و یا 5% گلیسرول توانست ماندگاری بهتری را نسبت به رقیق کننده فاقد پلاسمای زرده تخم مرغ نشان دهد (P<0.05). همچنین فراسنجه‌های زنده مانی اسپرم پس از انجماد و یخ گشایی در رقیق کننده حاوی 20 و 40% پلاسمای زرده تخم مرغ و 5% گلیسرول بهتر بود. نتیجه‌گیری: رقیق کننده تریس حاوی 20% پلاسمای زرده مرغ خانگی می‌تواند رقیق کننده مناسبی جهت نگهداری کوتاه و طولانی مدت اسپرم سگ در نظر گرفته شود.

کلیدواژه‌ها


Andersen, K (1975). Insemination with frozen dog semen based on a new insemination technique. Reprod. Dom. Anim., 10: 1-4.
Bair, C and Marion, W (1978). Yolk cholesterol in eggs from various avian species. Poult. Sci., 57: 1260-1265.
Bathgate, R; Maxwell, WMC and Evans, G (2006). Studies on the effect of supplementing boar semen cryopreservation media with different avian egg yolk types on in vitro post-thaw sperm quality. Reprod. Dom. Anim., 41: 68-73.
Belala, R; Amirat-Briand, L; Vinciguerra, L; Tainturier, D; Kaidi, R; Thorin, C and Bencharif, D (2016). Effect of equilibration time on the motility and functional integrity of canine spermatozoa frozen in three different extenders. Res. Vet. Sci., 106: 66-73.‏
Bencharif, D; Amirat, L; Anton, M; Schmitt, E; Desherces, S; Delhomme, G and Tainturier, D (2008). The advantages of LDL (low density lipoproteins) in the cryopreservation of canine semen. Theriogenology. 70: 1478-1488.
Bencharif, D; Amirat-Briand, L; Garand, A; Anton, M; Schmitt, E; Desherces, S; Delhomme, G; Langlois, ML; Barrière, P; Destrumelle, S and Vera-Munoz, O (2010). Freezing canine sperm: Comparison of semen extenders containing Equex® and LDL (Low Density Lipoproteins). Anim. Reprod. Sci., 119: 305-313.
Bencharif, D and Dordas-Perpinya, M (2020). Canine semen cryoconservation: Emerging data over the last 20 years. Reprod. Domest. Anim., 55: 61-65.
Bergeron, A and Manjunath, P (2006). New insights towards understanding the mechanisms of sperm protection by egg yolk and milk. Mol. Reprod. Dev., 73: 1338-1344.
Brito, MM; Lúcio, CF; Angrimani, DS; Losano, JDA; Dalmazzo, A; Nichi, M and Vannucchi, CI (2017). Comparison of cryopreservation protocols (single and two-steps) and thawing (fast and slow) for canine sperm. Anim. Biotech., 28: 67-73.
Bucak, N; Atessahin, M and Yuce, A (2008). Effect of antioxidant & oxidative stress parameter on ram semen after the freeze-thawing process. Small Rum. Res., 75: 128-134.
Cardoso, RDCS; Silva, AR; Uchoa, DC and da Silva, LDM (2003). Cryopreservation of canine semen using a coconut water extender with egg yolk and three different glycerol concentrations. Theriogenology. 59: 743-751.
Clulow, JR; Maxwell, WMC; Evans, G and Morris, LHA (2007). A comparison of duck and chicken egg yolk for cryopreservation of stallion sperm. Aust. Vet. J., 85: 232-235.
Colas, G (1975). Effect of initial freezing temperature, addition of glycerol and dilution on the survival and fertilizing ability of deep-frozen ram semen. Reproduction. 42: 277-285.
Curry, MR (2000). Cryopreservation of semen from domestic livestock. Rev. Reprod., 5: 46-52.
Fontbonne, A and Badinand, F (1993). Studies on freezing dog spermatozoa: effect of glycerol on motility after thawing. J. Reprod. Fert., (Suppl.), 47: 531-532.
Foulkes, JA; Sweasey, D and Goodey, RG (1980). Fertility of bull spermatozoa in egg-yolk diluents of varied lipid fatty acid composition. J. Reprod. Fertil., 60: 165-169.
Futino, DO; Mendes, MCB; Matos, WNL; Mondadori, RG and Lucci, CM (2010). Glycerol, methyl-formamide and dimethyl-formamide in canine semen cryopreservation. Reprod. Domest. Anim., 45: 214-220.
Gholami, M; Faraji, Z and Zamiri, MJ (2012). Effect of egg yolk of four avian species on the cryopreserved ram spermatozoa.‏ Iran. J. Vet. Res., 13: 23-27.
Graham, JK and Foote, RH (1987). Effect of several lipids, fatty acyl chain length, and degree of unsaturation on the motility of bull spermatozoa after cold shock and freezing. Cryobiology. 24: 42-52.
Hermansson, U and Forsberg, CL (2006). Freezing of stored, chilled dog spermatozoa. Theriogenology. 65: 584-593.
Holt, WV (1997). Alternative strategies for the long-term preservation of spermatozoa. Reprod. Fert. Dev., 9: 309-320.
Holt, WV (2000). Fundamental aspects of sperm cryobiology: the importance of species and individual differences. Theriogenology. 53: 47-58.
Ivanova-Kicheva, MG; Bobadov, N and Somlev, B (1997). Cryopreservation of canine semen in pellets and in 5-ml aluminum tubes using three extenders. Theriogenology. 48: 1343-1349.
Kaźmierska, M; Jarosz, B; Korzeniowska, M; Trziszka, T and Dobrzański, Z (2005). Comparative analysis of fatty acid profile and cholesterol content of egg yolks of different bird species. Pol. J. Food Nutr. Sci., 14: 69-73.
Kutzler, MA (2005). Semen collection in the dog. Theriogenology. 64: 747-754.
Linde-Forsberg, C (1991). Achieving canine pregnancy by using frozen or chilled extended semen. Vet. Clin. North Am. Small Anim. Pract., 21: 467-485.Lopes, KRF; Costa, LLM; Lima, GL; Souza, ALP and Silva, AR (2009). Dimethylformamide is no better than glycerol for cryopreservation of canine semen. Theriogenology. 72: 650-654.
Mosaferi, S; Niasari-Naslaji, A; Abarghani, A; Gharahdaghic, AA and Gerami, A (2005). Biophysical and biochemical characteristics of bactrian camel semen collected by artificial vagina. Theriogenology. 63: 92-101.
Moussa, M; Martinet, V; Trimeche, A; Tainturier, D and Anton, M (2002). Low density lipoproteins extracted from hen egg yolk by an easy method: cryoprotective effect on frozen-thawed bull semen. Theriogenology. 57: 1695-1706.
Nazeri, E; Niasari-Naslaji, A; Ghasemzadeh Nava, H and Panahi, F (2022). Cryopreservation of canine semen using plasma egg yolk of three avian species. Iran. Vet. J., 18: 55-62.
Okano, T; Murase, T; Asano, M and Tsubota, T (2004). Effects of final dilution rate, sperm concentration and times for cooling and glycerol equilibration on post-thaw characteristics of canine spermatozoa. J. Vet. Med. Sci., 66: 1359-1364.
Olar, TT; Bowen, RA and Pickett, BW (1989). Influence of extender, cryoperservative and seminal processing procedures on post-thaw motility of canine spermatozoa frozen in straws. Theriogenology. 31: 451-461.
Panahi, F; Niasari-Naslaji, A; Seyedasgari, F; Ararooti, T; Razavi, K and Moosavi-Movaheddi, AA (2017). Supplementation of tris-based extender with plasma egg yolk of six avian species and camel skim milk for chilled preservation of dromedary camel semen. Anim. Reprod. Sci., 184: 11-19.‏
Peña, AI; Barrio, F; Quintela, LA and Herradón, PG (1998). Effect of different glycerol treatments on frozen-thawed dog sperm longevity and acrosomal integrity. Theriogenology. 50: 163-174.
Peña, A and Linde-Forsberg, C (2000). Effects of Equex, one-or two-step dilution, and two freezing and thawing rates on post-thaw survival of dog spermatozoa. Theriogenology. 54: 859-875.
Pillet, E; Duchamp, G; Batellier, F; Beaumal, V; Anton, M; Desherces, S; Schmitt, E and Magistrini, M (2011). Egg yolk plasma can replace egg yolk in stallion freezing extenders. Theriogenology. 75: 105-114.
Platz, CC and Seager, SW (1977). Successful pregnancies with concentrated frozen canine semen. Lab. Anim. Sci., 27: 1013-1016.
Quinn, PJ; Chow, PYW and White, IG (1980). Evidence that phospholipid protects ram spermatozoa from cold shock at a plasma membrane site. Reproduction. 60: 403-407.‏
Rijsselaere, T; Van Soom, A; Maes, D and de Kruif, A (2002). Effect of centrifugation on in vitro survival of fresh diluted canine spermatozoa. Theriogenology. 57: 1669-1681.
Rota, A; Ström, B and Linde-Forsberg, C (1995). Effects of seminal plasma and three extenders on canine semen stored at 4°C. Theriogenology. 44: 885-900.
Rota, A; Ström, B; Linde-Forsberg, C and Rodriguez-Martinez, H (1997). Effects of Equex STM paste on viability of frozen-thawed dog spermatozoa during in vitro incubation at 38°C. Theriogenology. 47: 1093-1101.
SAS (2016). Statistical Analysis System: A User’s Guide. Ver. 9.4, Cary, NC, SAS Institute Inc.
Shah, SAH; Andrabi, SMH; Ahmed, H and Qureshi, IZ (2017). Chicken egg yolk plasma in tris-citric acid extender improves the quality and fertility of cryopreserved water buffalo (Bubalus bubalis) spermatozoa. Theriogenology. 89: 32-40.
Silva, AR; Cardoso, RDCS; Uchoa, DC and da Silva, LDM (2002). Effect of tris-buffer, egg yolk and glycerol on canine semen freezing. Vet. J., 164: 244-246.
Silva, AR; Cardoso, RDCS; Uchoa, DC and Silva, LDM (2003). Quality of canine semen submitted to single or fractionated glycerol addition during the freezing process. Theriogenology. 59: 821-829.
 
Ström, B; Rota, A and Linde-Forsberg, C (1997). In vitro characteristics of canine spermatozoa subjected to two methods of cryopreservation. Theriogenology. 48: 247-256.
Su, L; Li, X; Quan, J; Yang, S; Li, Y; He, X and Tang, X (2008). A comparison of the protective action of added egg yolks from five avian species to the cryopreservation of bull sperm. Anim. Reprod. Sci., 104: 212-219.
Trimeche, A; Anton, M; Renard, P; Gandemer, G and Tainturier, D (1997). Quail egg yolk: a novel cryoprotectant for the freeze preservation of poitou jackass sperm. Cryobiology. 34: 385-393.
Vishwanath, R; Shannon, P and Curson, B (1992). Cationic extracts of egg yolk and their effects on motility: survival and fertilizing ability of bull sperm. Anim. Reprod. Sci., 29: 185-194.
Wall, RJ and Foote, RH (1999). Fertility of bull sperm frozen and stored in clarified egg yolk-tris-glycerol extender. J. Dairy Sci., 82: 817-821.
Watson, PF (1975). The interaction of egg yolk and ram spermatozoa studied with a fluorescent probe. J. Reprod. Fertil., 42: 105-111.
Watson, PF (1979). The preservation of semen in mammals. Oxford Rev. Reprod. Biol., 1: 283-350.‏
Watson, PF; Kunze, E; Cramer, P and Hammerstedt, RH (1992). A comparison of critical osmolality and hydraulic conductivity and its activation energy in fowl and bull spermatozoa. J. Androl., 13: 131-138.
Watson, PF and Marin, ICA (1975). Effects of egg yolk, glycerol and the freezing rate on the viability and acrosomal structures of frozen ram spermatozoa. Aust. J. Biol. Sci., 28: 153-159.