شناسایی ژن‌های مرتبط با حدت در استرپتوکوکوس آگالاکتیه جدا شده از ورم پستان گاو

نوع مقاله : مقاله کوتاه

نویسندگان

چکیده

پیشینه: ورم پستان یکی از گران‌ترین بیماری‌ها در صنایع لبنی است. این بیماری با کاهش تولید شیر و همچنین هزینه‌های مربوط به درمان سبب زیان‌های مالی سنگینی می‌شود. استرپتوکوکوس آگالاکتیه عامل ورم پستان گاوی مسری و دارای فاکتورهای حدت مختلف است که در بیماری‌زایی آن نقش دارند. هدف: هدف اصلی این مطالعه ارزیابی فراوانی ژن‌های حدت استرپتوکوکوس آگالاکتیه بود. روش کار: در مطالعه حاضر، 98 گونه استرپتوکوکوس از 320 نمونه شیر جمع آوری شده از مجتمع بالینی دامپزشکی، جوناگاد جدا شد. از بین این ایزوله‌ها، 42 جدایه استرپتوکوکوس آگالاکتیه برای بررسی ژن‌های حدت مورد استفاده قرار گرفتند. نتایج: همه گونه‌های استرپتوکوکوس در سطح جنس با هدف قرار دادن ژن tuf و در سطح گونه استرپتوکوکوس آگالاکتیه‌ها با هدف قرار دادن ژن 16S rRNA شناسایی شدند. برای بررسی ژن‌های حدت، ژن‌های scpB، cfb، و cylE مورد هدف قرار گرفتند. از 42 جدایه استرپتوکوکوس آگالاکتیه، به ترتیب در 15، 16، و 10 جدایه دارای ژن‌های scpB، cfb، و cylE بودند. نتیجه‌گیری: این مطالعه به ما کمک می‌کند تا ویژگی‌های حدت و مکانیسم مسؤول ایجاد سویه‌های جدید در اپیدمیولوژی ورم پستان را در پاسخ به استراتژی‌های پیشگیری و کنترل بشناسیم.

کلیدواژه‌ها


Abd Alkader, FS and Hyyawi, SM (2021). Isolation and identification of GBS bacteria from mastitis by CAMP test and Lancefield’s serological grouping. Plant Arch., 21: 770-773.
Amosun, E; Ajuwape, A and Adetosoye, AI (2010). Bovine streptococcal mastitis in southwest and northern states of Nigeria. Afr. J. Biomed. Res., 13: 33-37.
Atyabi, N; Vodjgani, M; Gharagozloo, F and Bahonar, A (2006). Prevalence of bacterial mastitis in cattle from the farms around Tehran. Iran. J. Vet. Res., 7: 76-79.
Beckmann, C; Waggoner, JD and Harris, TO (2002). Identification of novel adhesins from group B streptococci by use of phage display reveals that C5a peptidase mediates fibronectin binding. Infect. Immun., 70: 2869-2876.
Bergseng, H; Lars, B; Marite, R and Kare, B (2007). Real-time PCR targeting the sip gene for detection of group B Streptococcus colonization in pregnant women at delivery. J. Med. Microbiol., 56: 223-228.
Carvalho-Castro, GA; Silva, JR; Paiva, LV; Custódio, DA; Moreira, RO; Mian, GF; Prado, IA; Chalfun-Junior, A and Costa, GM (2017). Molecular epidemiology of Streptococcus agalactiae isolated from mastitis in Brazilian dairy herds. Braz. J. Microbiol., 48: 551-559.
Dad, RK; Shakoor, A; Avais, M; Muhammad, G and Hussain, R (2007). Serology based immunological cross reactivity among various isolates of Streptococcus agalactiae from mastitic buffaloes. Ital. J. Anim. Sci., 6: 865-868.
Ding, Y; Zhao, J; He, X; Li, M; Guan, H; Zhang, Z and Li, P (2016). Antimicrobial resistance and virulence-related genes of Streptococcus obtained from dairy cows with mastitis in Inner Mongolia, China. Pharm. Biol., 54: 162-167.
Dmitriev, A; Shakleina, E and Tkacikova, L (2002). Genetic heterogeneity of the pathogenic potentials of human and bovine group B Streptococci. Folia Microbiol., 47: 291-295.
Dmitriev, A; Suvorov, A; Shen, A and Yang, H (2004). Clinical diagnosis of group B streptococci by scpB gene based PCR. Indian J. Med. Res., 199: 233-236.
Doran, KS; Liu, G and Nizet, V (2003). Group B streptococcal β-hemolysin/cytolysin activates neutrophil signaling pathways in brain endothelium and contributes to development of meningitis. J. Clin. Investig., 112: 736-744.
El-Jakee, J; Hableel, HS; Kandil, M; Hassan, OF; Khairy, EA and Marouf, SA (2013). Antibiotic resistance patterns of Streptococcus agalactiae isolated from mastitic cows and ewes in Egypt. Glob. Vet., 10: 264-270.
Elkenany, R (2020). CylE and mig as virulence genes of streptococci isolated from mastitis in cows and buffaloes in Egypt. Mansoura Vet. Med. J., 21: 149-154.
FDA (2001). Bacteriological Analytical Manual. Food and Drug Administration (FDA). Cited from http://www.scribd. com, Accessed on 08.02.2021.
Ghose, B and Sharda, R (2004). Streptococcal mastitis in dairy cows. Indian Vet. Med. J., 28: 163-164.
Harley, JP and Prescott, LM (2002). Laboratory exercises in microbiology. 5th Edn., Chapter 30: Proteins, amino acids, and Enzymes VII: Oxidase test. New York, USA, The McGraw-Hill Co., PP: 179-184.
Jain, B; Tewari, A; Bhandari, BB and Jhala, MK (2012). Antibiotic resistance and virulence genes in Streptococcus agalactiae isolated from cases of bovine subclinical mastitis. Vet. Arh., 82: 423-432.
Javia, BB; Mathapati, BS; Barad, DB; Ghodasara, SN; Savsani, HH; Bhadaniya, AR; Fefar, DT; Patel, UD and Sindhi, SH (2020). Bacteriological and molecular detection with antimicrobial resistance pattern of major Streptococcus spp. isolated from bovine mastitis. Int. J. Curr. Microbiol. App. Sci., 9: 2443-2451.
Javia, BB; Purohit, JH; Mathapati, BS; Barad, DB; Savsani, HH; Ghodasara, SN; Kalariya, VA; Patel, UD and Nimavat, VR (2018). Molecular detection and antimicrobial resistance pattern of Staphylococci isolated from clinical and subclinical bovine mastitis. Indian J. Vet. Sci. Biotechnolo., 14: 13-16.
Kia, G; Mehdi, G and Keyvan, R (2014). Prevalence and antibiotic susceptibility of Streptococcus spp. in cows with mastitis in Germi, Iran. Anim. Vet. Sci., 2: 31-35.
Nithinprabhu, K (2010). Isolation, characterization and genetic diversity of Streptococcus species in subclinical bovine mastitis. MVSc Thesis, Karnataka Veterinary, Animal and Fisheries Sciences University, Bidar, India. P: 53.
Picard, FJ; Ke, D; Boudreau, DK; Boissinot, M; Huletsky,
A; Richard, D; Ouellette, M; Roy, PH and Bergeron, MG
(2004). Use of tuf sequences for genus-specific PCR detection and phylogenetic analysis of 28 streptococcal species. J. Clin. Microbiol., 42: 3686-3695.
Radtke, A; Bruheim, T; Afset, JE and Bergh, K (2012). Multiple-locus variant-repeat assay (MLVA) is a useful tool for molecular epidemiologic analysis of Streptococcus agalactiae strains causing bovine mastitis. Vet. Microbiol., 157: 398-404.
Richards, VP; Lang, P; Bitar, PDP; Lefebure, T; Schukken, YH; Zadoks, RN and Stanhope, MJ (2011). Comparative genomics and the role of lateral gene transfer in the evolution of bovine adapted Streptococcus agalactiae. Infect. Genet. Evol., 11: 1263-1275.
Riffon, R; Sayasith, K; Khalil, H; Dubreuil, P; Drolet, M and Lagace, J (2001). Development of a rapid and sensitive test for identification of major pathogens in bovine mastitis by PCR. J. Clin. Microbiol., 39: 2584-2589.
Sandholm, M; Honkanen-Buzalski, L; Kaartinen, S and Pyörälä, S (1995). Isolation and identification of pathogens from milk. In: The bovine udder and mastitis. Jyväskylä, Finland, Gummerus Press. PP: 121-141.
Shrestha, S and Bindari, YR (2012). Prevalence of subclinical mastitis among dairy cattle in Bhaktapur District, Nepal. Int. J. Agric. Biosci., 1: 16-19.
Yang, Y; Liu, Y; Ding, Y; Yi, L; Ma, Z; Fan, H and Lu, C (2013). Molecular characterization of Streptococcus agalactiae isolated from bovine mastitis in Eastern China. PLoS One. 8: e6775.