ایجاد اکینوکوکوز کیستی اولیه در موش‌های آزمایشگاهی: نتایج تحقیق ما در سویه بالب سی

نوع مقاله : مقاله کوتاه

نویسندگان

چکیده

پیشینه: ایجاد اکینوکوکوز کیستی تجربی در موش‌های آزمایشگاهی برای مطالعه این بیماری ضروری است. اکینوکوکوز کیستی تجربی ممکن است به صورت اولیه یا ثانویه ایجاد شود که فرم اولیه برای مطالعه بیماری قابل اعتمادتر است. هدف: هدف از مطالعه ارزیابی امکان ایجاد اکینوکوکوز کیستی اولیه در موش‌های بالب سی از طریق خوراندن تخم‌های انگل اکینوکوکوس گرانولوسوس بود. روش کار: تخم‌های انگل از بندهای گراوید کرم‌های بالغ جمع آوری شده از یک سگ آلوده به دست آمد. 34 سر موش بالب سی ماده به 4 گروه تقسیم و به روش دهانی با تخم‌های انگل آلوده شدند: 1) موش‌های دارای ایمنی طبیعی با 1000 تخم انگل در یک نوبت، 2) موش‌های دارای ایمنی طبیعی با 500 تخم انگل در سه نوبت، 3) موش‌های با ایمنی سرکوب شده با 1000 تخم انگل در یک نوبت، 4) موش‌های با ایمنی سرکوب شده با 500 تخم انگل در سه نوبت. 5/6 ماه بعد، همه موش‌ها کالبدگشایی و اندام‌های داخلی آن‌ها از نظر وجود کیست‌های هیداتید مورد بررسی قرار گرفت. کبد موش‌های آلوده نیز از نظر وجود رد پای انگل با روش PCR بررسی شدند. نتایج: هیچ کیست هیداتید رشد یافته یا در حال رشدی در حفره شکمی یا اندام‌های داخلی هیچکدام از موش‌ها مشاهده نشد. در مطالعه مولکولی نیز تمام نمونه‌های بررسی شده برای مشاهده رد پای انگل در کبد منفی بودند. نتیجه‌گیری: نتایج مطالعه حاضر نشان داد که موش‌های بالب سی میزبان مناسبی برای ایجاد اکینوکوکوز اولیه از طریق خوراندن تخم‌های انگل اکینوکوکوس گرانولوسوس نیستند.

کلیدواژه‌ها


Ahmadnia, S; Moazeni, M and Mohammadi-Samani, S (2014). Hydatid cyst formation in male Balb/c mice following the intraperitoneal injection of live protoscoleces and activated oncospheres: a comparative study. J. Parasit. Dis., 38: 77-80.
Barnett, LE (1936). White mice and experimental echino-coccosis. A.N.Z. J. Surg., 5: 323.
Breijo, M; Anesetti, G; Martinez, L; Sim, RB and Ferreira, AM (2008). Echinococcus granulosus: the establishment of the metacestode is associated with control of complement-mediated early inflammation. Exp. Parasitol., 118: 188-196.
Brunetti, E; Praticò, L; Neumayr, A; Maestri, M and Tamarozzi, F (2016). Update on treatment for cystic echinococcosis of the liver. Curr. Treat. Options Infect. Dis., 8: 153-164.
Colli, CW and Schantz, PM (1974). Growth and development of Echinococcus granulosus from embryophores in an abnormal host (Mus musculus). J. Parasitol., 58: 422-426.
Colli, CW and Williams, JF (1972). Influence of temperature on infectivity of eggs of Echinococcus granulosus in laboratory rodents. J. Parasitol., 58: 422-426.
Conchedda, M; Gabriele, F and Bortoletti, G (2004). Immunobiology of cystic echinococcosis. Parassitologia. 46: 375-380.
Dempster, RP; Berridge, MV; Harrison, GB and Heath, DD (1991). Echinococcus granulosus: development of an intermediate host mouse model for use in vaccination studies. Int. J. Parasitol., 21: 549-554.
Gómez, R; Allaoua, Y; Colmenares, R; Gil, S; Roquero, P and Ramia, JM (2016). Hydatid cyst of the gallbaldder: A systematic review of the literature. World J. Hepatol., 8: 1087-1092.
Heath, DD (1991). Daily egg-production of dogs infected with Echinococcus granulosus. Arch. Hidatidosis. 30: 321-328.
McManus, DP; Gray, DJ; Zhang, W and Yang, Y (2012). Diagnosis, treatment, and management of echinococcosis. B.M.J., 344: e3866.
Mourglia-Ettlin, G; Cucher, M; Arbildi, P; Rosenzvit, M and Demattei, S (2016a). Natural and induced antibodies contribute to differential susceptibility to secondary cystic echinococcosis of Balb/c and C57Bl/6 mice. Immunobiology. 221: 103-115.
Mourglia-Ettlin, G; Merlino, A; Capurro, R and Dematteis, S (2016b). Susceptibility and resistance to Echinococcus granulosus infection: Associations between mouse strains and early peritoneal immune responses. Immunobiology. 221: 418-426.
Rahimi, HR; Sarkari, B; Mohammadzadeh, T and Sadjjadi, SM (2011). Immune responses to antigens of in vitro reared Echinococcus granulosus adult worms in Balb/c mice. Iran J. Immunol., 8: 236-243.
Romig, T and Bilger, B (1999). Animal models for Echinococcosis. In Handbook of animal models of infection. PP: 877-884.
Salih, AM; Kakamad, FH; Hammood, ZD; Yasin, B and Ahmed, DM (2017). Abdominal wall Hydatid cyst: A review a literature with a case report. Int. J. Surg. Case Rep., 37: 154-156.
Schwabe, CW (1968). Larval Echinococcus infection in laboratory animals. Bulletin of the World Health Organization. 39: 126-127.
Smyth, JD and Howkins, AB (1966). An in vitro technique for the production of eggs of Echinococcus granulosus by maturation of partly developed strobila. Parasitology. 56: 763-766.
Yamashita, JIRO (1968). Development of Echinococcus in laboratory animals. Bulletin of the World Health Organization. 39: 127-130.
Yamashita, J; Ohbayashi, M; Kitamura, Y; Suzuki, K and Okugi, M (1958). Studies on echinococcosis VIII. Experimental Echinococcosis multilocularis in various rodents; especially on the difference of susceptibility among uniform strains of the mouse. JPN. J. Vet. Res., 6: 135-155.
Yamashita, J; Ohbayashi, M and Konno, S (1956). Studies on Echinococcosis IV. Experimental infection of the white mouse. JPN. J. Vet. Res., 4: 123-128.
Yamashita, J; Ohbayashi, M and Konno, S (1957). Studies on Echinococcosis VI: Secondary Echinococcosis multilocularis in Mice. JPN. J. Vet. Res., 5: 197-202.
Zak, O and Sande, MA (1999). Hand book of animal models of infection. In: Romig, T and Bilger, B (Eds.), Animal models for echinococcosis. (1st Edn.), San Diego, London, Boston, Academic Press. PP: 877-884.
Zhang, W; Ross, AG and McManus, DP (2008). Mechanisms of immunity in hydatid disease: implications for vaccine development. J. Immunol., 181: 6679-6685.
Zhang, W; You, H; Zhang, Z; Turson, G; Hasyet, A and McManus, DP (2001). Further studies on an intermediate host murine model showing that a primary Echinococcus granulosus infection is protective against subsequent oncospheral challenge. Parasitol. Int., 50: 279-283.