سنجش جریان جانبی برای تشخیص سرمی سریع لپتوسپیروز گاوی

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: لپتوسپیروز به عنوان یک بیماری مهم اقتصادی در گاو در نظر گرفته می‌شود. بیماری به دلیل آزمایش‌های سرولوژیک دست و پاگیر که فقط در آزمایشگاه‌های معتبر قابل انجام هستند به درستی پایش نمی‌شود. این مطلب اهمیت تولید یک تست تشخیصی سریع در سطح مزرعه را نشان می‌دهد. هدف: هدف از این مطالعه تولید یک تست تشخیصی pen-side بر اساس سنجش جریان جانبی (LFA) برای تشخیص آنتی بادی‌های لپتوسپیرا بود. روش کار: نوار LFA با آنتی ژن استخراج شده به وسیله حرارت از لپتوسپیرا اینتروگانس سرووار پومونا تهیه شد. برای ارزیابی عملکرد LFA تولید شده، در مجموع از 300 نمونه سرم گاوی به همراه تاریخچه بالینی آن‌ها استفاده شد و غربالگری اولیه برای آنتی بادی‌های لپتوسپیرا توسط تست آگلوتیناسیون میکروسکوپی استاندارد (MAT) انجام شد. حساسیت، ویژگی و تطابق (شاخص کاپا) بین LFA و MAT محاسبه شد. پایداری LFA در روزهای 30، 60، 90، و 120 مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج: در مجموع از 300 نمونه بررسی شده، در تست MAT 225 مورد مثبت و 75 مورد منفی و در تست LFA 208 مورد مثبت و 92 مورد منفی بودند. حساسیت و ویژگی LFA تولید شده به ترتیت 7/90% و 7/94% بود. نتایج روش LFA به طور قابل ملاحظه‌ای، با شاخص کاپا 79/0، با تست MAT مطابقت داشت. نوارهای LFA در دمای 4 درجه سانتیگراد به مدت 120 روز پایدار بودند. نتیجه‌گیری: تست سریع pen-side مبتنی بر سنجش جریان جانبی تولید و کاربرد آن در تشخیص لپتوسپیروز گاوی مورد ارزیابی قرار گرفت.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Appassakij, H; Silpapojakul, K; Wansit, R and Woodtayakorn, J (1995). Evaluation of the immuno-fluorescent antibody test for the diagnosis of human leptospirosis. Am. J. Trop. Med. Hyg., 52: 340-343.
Behera, SK; Sabarinath, T; Deneke, Y; Bansal, SK; Mahendran, K; Kumar, A; Senthil, K; Verma, MR; ChandraSekar, S and Atif Ali, S (2021). Evaluation of the diagnostic potential and DIVA capability of recombinant LigBCon1-5 protein of Leptospira interrogans serovar Pomona in canine leptospirosis. Iran. J. Vet. Res., 22: 120-128.
Biswal, BC; Kar, BC; Ratnam, S; Sureshbabu, L and Natarajaseenivasan, K (2000). Evidence of antibodies to leptospira among farm cattle and farm workers in Orissa state. Ind. Vet. J., 77: 622-623.
Caimia, K and Ruybal, P (2020). Leptospira spp., a genus in the stage of diversity and genomic data expansion. Infect. Genet. Evol., https:/doi.org/10.1016/j.meegid.2020.104241.
Dikken, H and Kmety, E (1978). Serological typing methods of leptospires. Methods Microbiol., 11: 259-294.
Doungchawee, G; Sutdan, D; Niwatayakul, K; Inwisai, T; Sitthipunya, A; Boonsathorn, N; Sakulterdkiat, T; Sirawaraporn, W and Thongboongerd, V (2017). Development and evaluation of an immuno-chromatographic assay to detect serum anti-leptospiral lipopolysaccaride IgM in acute leptospirosis. Sci. Rep., 7: 2309. doi: 10.1038/s41598-017-02654-8.
Faine, S (1982). Guidelines for the control of Leptospirosis. World Health Organization, Geneva. P: 17.
Gussenhoven, GC; Van der hoorn, MAWG; Goris, MGA; Terpstra, WJ; Hartskeerl, RA; Mol, BW; Van ingen, CW and Smits, HL (1997). Lepto dipstick, a dipstick assay for detection of Leptospira-specific immunoglobulin M antibodies in human sera. J. Clin. Microbiol., 35: 92-97.
Jai sunder, T; Sujatha, A; Kundu, M and Kundu, S (2018). Carrier status and seroprevalence of leptospirosis in cattle of South Andaman. Ind. J. Anim. Res., 52: 140-143.
Levett, PN and Whittington, CU (1998). Evaluation of the indirect hemagglutination assay for diagnosis of acute leptopsirosis. J. Clin. Microbiol., 36: 11-14.
Maze, MJ; Sharples, KJ; Allan, KJ; Rubach, MP and Crump, JA (2019). Diagnostic accuracy of leptospirosis whole-cell lateral flow assays: a systemic review and meta-analysis. Clin. Microbiol. Infect., 25: 437-444.
Office International des Épizooties (OIE-World Organisation for Animal Health) (2018). Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals, OIE. Paris. Chapter 3.1.12. PP: 503-516.
Priya, CG; Bhavani, K; Rathinam, SR and Muthukkaruppan, VR (2003). Identification and evaluation of LPS antigen for serodiagnosis of uveitis associated with Leptospirosis. J. Med. Microbiol., 52: 667-673.
Radostits, OM; Gay, CC; Hinchcliff, KW and Constable, PD (2010). Veterinary Medicine: A text book of the diseases of Cattle, Sheep, Pigs, Goats and Horses. 10th Edn., Edinburgh, London, New York, Oxford, Philadelphia, St. Louis, Sydney, Toronto, W. B. Saunders Elsevier. pp: 1102-1103.
Rani Prameela, D; Sreenivasulu, D; Vijayachari, P and Natarajseenivasan, K (2013). Seroepidemiology of leptospirosis in AndhraPradesh. Arch. Clin. Microbiol., 4: 1-10.
Sehgal, SC; Vijayachari, P; Sugunan, AP and Umapathi, T (2003). Field application of Lepto lateral flow for rapid diagnosis of Leptospirosis. J. Med. Microbiol., 52: 897-901.
Senthilkumar, K; Ravikumar, G and Aravindbabu, RP (2021). Spatio-temporal distribution of bovine leptospirosis in Tamil Nadu and a risk factor analysis. Vet. Med. (Praha), 66: 503-512.
Smits, HL; Eapen, CK; Sugathan, S; Kuriakose, M; Gasem, MH; Yersin, C; Sasaki, D; Pujianto, B; Vestering, M; Abdoel, TH and Gussenhoven, GC (2001). Lateral-Flow assay for rapid serodiagnosis of human Leptospirosis. Clin. Diagn. Lab. Immunol., 8: 166-169.
Srivastava, SK; Singh, SP and Srivastava, NC (1983). Sero-prevalence of leptospirosis in animals and man in India. Ind. J. Comp. Microbiol. Immunol. Infect. Dis., 4: 243-245.
Tansuphasiri, U; Deepradit, S; Phulsuksombati, D and Tangkanakul, W (2005). A test strip IgM Dot-ELISA
assay using Leptospiral antigen of endemic strains for serodiagnosis of acute Leptospirosis. J. Med. Assoc. Thail., 88: 391-398.
Terpstra, WJ; Ligthart, GS and Schoone, GJ (1985). ELISA for the detection of specific IgM and IgG in human leptospirosis. J. Gen. Microbiol., 131: 377-385.
Vanithamani, S; Shanmughapriya, S; Narayanan, R; Raja, V; Kanagavel, M; Sivasankari, K and Natarajaseenivasan, K (2013). Lipopolysaccharide specific immunochromatography based lateral flow assay for serogroup specific diagnosis of leptospirosis in India. Plos One. 10: e0137130.
Vijayachari, P (2007). Leptospira, In: Leptospirosis laboratory manual, Regional Medical Research Centre, Indian Council of Medical Research, Port Blair, India. https://apps.who.int/ iris/bitstream/handle/10665/205429/B2147.pdf?sequence=1.