وقوع گونه‌های سالمونلا در طیور خانگی در بوسنی و هرزگوین

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: طیور آلوده یکی از مهمترین مخازن سالمونلا هستند. هدف: مطالعه ارائه شده در اینجا، به منظور بررسی وقوع سالمونلا در نمونه‌های مدفوع در میان گله‌های منتخب طیور خانگی در بوسنی و هرزگوین انجام شد. روش کار: جداسازی و شناسایی سالمونلا مطابق با استاندارد   BAS EN ISO 6579/AMD 1:2007 انجام شد. هنگامی که جنس سالمونلا تایید شد، تعیین فرمول آنتی ژنی جدایه‌های سالمونلا مطابق با استاندارد BAS CEN ISO/TR 6579-3:2015 انجام شد. پس از آن، سروتیپ‌های سالمونلا تحت آزمایش حساسیت آنتی بیوتیکی با استفاده از EUVSEC sensititre microtiter plates (Trek Diagnostic Systems, England) آغشته به غلظت‌های مختلف آنتی بیوتیک، قرار گرفتند. در پایان، از Real-time PCR برای شناسایی ژن‌های کدکننده بتالاکتامازهای وسیع الطیف (ESBL) و کارباپنماز (blaTEM, blaSHV, blaCTX-M, blaCMY, blaKPC, blaNDM, blaOXA-48, blaVIM, blaGES) استفاده شد. نتایج: گونه‌های سالمونلا در مدفوع جمع شده از چهار محل نگهداری طیور خانگی، که فقط مرغ نگهداری می‌کردند، شناسایی شدند. با آگلوتیناسیون لام سه جدایه به عنوان سروتیپ انتریتیدیس و یک جدایه به عنوان سروتیپ تیفی‌موریوم تایید شدند. تست حساسیت آنتی بیوتیکی به وسیله میکرودایلوشن مقاومت فنوتیپی را در بین این چهار جدایه نشان نداد. Real-time PCR که به منظور شناسایی ژن‌های کد کننده ESBL و کارباپنماز انجام شد، وجود ژن blaTEM را در یک جدایه سالمونلا انتریتیدیس نشان داد. نتیجه‌گیری: داده‌های ارائه شده در اینجا شواهد بیشتری را در مورد گردش سروتیپ‌های مختلف سالمونلا در طیور خانگی در بوسنی و هرزگوین ارائه می‌دهد. این یافته‌ها بر نقش بالقوه طیور خانگی در اپیدمیولوژی سالمونلوز و خطراتی که برای نگهداران، مصرف کنندگان و سلامت عمومی جامعه ایجاد می‌کنند، تاکید می‌کند.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Behravesh, CB; Brinson, D; Hopkins, BA and Gomez, TM (2014). Backyard poultry flocks and salmonellosis: a recurring, yet preventable public health challenge. Clin. Infect. Dis., 58: 1432-1438.
Christensen, LS; Josefsen, MH; Pedersen, K; Christensen, J; Bonnichsen, L; Sørensen, G and Hoorfar, J (2011). Real-time monitoring of Salmonella enterica in free-range geese. Appl. Environ. Microbiol., 77: 3160-3162.
Dale, E and Brown, C (2013). Zoonotic diseases from poultry. Braz. J. Vet. Pathol., 6: 76-82.
Elezaj, I (2015). The study of Salmonella spp. in poultry in an extensive farming systemster thesis, Veterinary Faculty of the University of Sarajevo, Bosnia and Herzegovina. PP: 34-37.
Emadi, CS; Hasanzadeh, M; Bozorg, MM and Mirzaei, S (2009). Characterization of the Salmonella isolates from backyard chickens in north of Iran, by serotyping, multiplex PCR and antibiotic resistance analysis. Archives of Razi Institute. 64: 77-83.
Grimont, PA and Weill, FX (2007). Antigenic formulae of the Salmonella serovars. WHO Collaborating Centre for Reference and Research on Salmonella. Institut Pasteur. 9th Edn., Institut Pasteur, France. PP: 1-166.
Guibourdenche, M; Roggentin, P; Mikoleit, M; Fields, PI; Bockemühl, J; Grimont, PA and Weill, FX (2010). Supplement 2003-2007 (No. 47) to the white-Kauffmann-Le minor scheme. Res. Microbiol., 161: 26-29.
Hadžiabdić, S (2014). Prevalence and antibiotic susceptibility of certain serotypes of Salmonella spp. in poultry. Master thesis. Veterinary Faculty of the University of Sarajevo, Bosnia and Herzegovina. PP: 47-75.
Holt, JG; Krieg, NR; Sneath, PH and Staley, JT (1994). Bergey’s manual of determinative bacteriology. 9th Edn., Baltimore, Maryland, USA, Williams and Wilkins. PP: 368-383.
Hulaj, B (2008). Findings of Salmonella spp. on laying hen farms in Kosovo. Master thesis, Veterinary Faculty of the University of Sarajevo, Bosnia and Herzegovina. P: 43.
ISO (2015). BAS CEN ISO/TR 6579-3:2015. Microbiology of the food chain – Horizontal method for the detection, enumeration and serotyping of Salmonella – Part 3: Guidelines for serotyping of Salmonella spp. The Institute for Standardization of Bosnia and Herzegovina, Sarajevo, Bosnia and Herzegovina.
ISO (2007). BAS EN ISO 6579/AMD 1:2007. Microbiology of food and animal feeding stuffs – Horizontal method for the detection of Salmonella spp. Amendment 1: Annex D: Detection of Salmonella spp. in animal faeces and in environmental samples from the primary production stage. The Institute for Standardization of Bosnia and Herzegovina, Sarajevo, Bosnia and Herzegovina.
Jafari, RA; Ghorbanpour, M and Jaideri, A (2007). An investigation into Salmonella infection status in backyard chickens in Iran. Int. J. Poult. Sci., 6: 227-229.
Lamas, A; Miranda, JM; Regal, P; Vázquez, B; Franco, CM and Cepeda, A (2018). A comprehensive review of non-enterica subspecies of Salmonella enterica. Res. Microbiol., 206: 60-73.
Le Minor, L and Popoff, MY (1987). Designation of Salmonella enterica sp. nov., nom. rev., as the type and only species of the genus Salmonella: request for an opinion. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 37: 465-468.
Manning, J; Gole, V and Chousalkar, K (2015). Screening for Salmonella in backyard chickens. Prev. Vet. Med., 120: 241-245.
Milošević, N; Perić, L; Strugar, V; Žikić, D and Pavlovski, Z (2005a) Rearing of fattening chickens on free range and extensively in chicken coop. Biotechnol. Anim. Husb., 21: 5-6.
Milošević, N; Perić, L; Strugar, V; Žikić, D and Pavlovski, Z (2005b). Rearing of fattening chickens on free range and extensively in chicken coop. Biotechnol. Anim. Husb., 21: 217-221.
National Food Institute (DTU) (2012). The 13th EURL-AR proficiency test Salmonella, Campylobacter and genotypic characterization 2012. [online]. Website: https://www.eurl-ar.eu/CustomerData/Files/Folders/19-reports-eqas-reports/ 255_report-2012-salm-camp-isbnfinal.pdf [accessed 02.02. 2013].
Neoh, HM; Tan, XE; Sapri, HF and Tan, TL (2019). Pulsed-field gel electrophoresis (PFGE): A review of the “gold standard” for bacteria typing and current alternatives. Infect. Genet. Evol., 74: 103935.
Özdemir, D (2020). The structural characteristics, management, and challenges of backyard poultry farming in residential areas of Turkey. Animals. 10: 2336.
Permin, A and Detmer, A (2007). Improvement of management and biosecurity practices in smallholder poultry producers. FAO, Rome. [online]. Website: http://citeseerx.ist.psu.edu/viewdoc/download?doi=10.1.1.520.9557&rep=rep1&type=pdf [accessed: 12.07.2019].
Pym, RAE; Guerne Bleich, E and Hoffmann, I (2006). The relative contribution of indigenous chicken breeds to poultry meat and egg production and consumption in the developing countries of Africa and Asia. In Proceedings of the XII European Poultry Conference. Vol. 1014., Verona, Italy, 10-14 September. P: 197.
Rešidbegović, E (2008). Monitoring for avian influenza, Newcastle disease and salmonellosis in extensively kept
poultry in the Federation of B&H. Project Final Report, Sarajevo, Bosnia and Herzegovina. The project is funded by Ministry of Agriculture, Water Management and Forestry of the Federation of Bosnia and Herzegovina.
Rešidbegović, E and Kavazović, A (2007). Finding of bacteria from the genus Salmonella spp. in poultry. 21st Symposium of Infectious Diseases of Bosnia and Herzegovina with international participation. Mostar, Bosnia and Herzegovina. P: 60.
Roschanski, N; Fischer, J; Guerra, B and Roesler, U (2014). Development of a multiplex real-time PCR for the rapid detection of the predominant beta-lactamase genes CTX-M, SHV, TEM and CIT-type AmpCs in Enterobacteriaceae. PloS One. 9: e100956.
Shah, DH; Board, MM; Crespo, R; Guard, J; Paul, NC and Faux, C (2020). The occurrence of Salmonella, extended-spectrum β-lactamase producing Escherichia coli and carbapenem resistant non-fermenting Gram-negative bacteria in a backyard poultry flock environment. Zoonoses Public Hlth., 67: 742-753.
Shah, DH; Paul, NC; Sischo, WC; Crespo, R and Guard, J (2017). Population dynamics and antimicrobial resistance of the most prevalent poultry-associated Salmonella serotypes. Poult. Sci., 96: 687-702.
Sonaiya, F (2008). Smallholder family poultry as a tool to initiate rural development. In International Conference Poultry in the Twenty-first Century: Avian Influenza and beyond, Bangkok, Thailand, held 5-7 November 2007. PP: 529-547.
Swayne, RL; Ludlam, HA; Shet, VG; Woodford, N and Curran, MD (2011). Real-time TaqMan PCR for rapid detection of genes encoding five types of non-metallo-(class A and D) carbapenemases in Enterobacteriaceae. Int. J. Antimicrob. Agents. 38: 35-38.
van der Zee, A; Roorda, L; Bosman, G; Fluit, AC; Hermans, M; Smits, PH; van der Zanden, AG; Te Witt, R; van Coppenraet, LEB; Stuart, JC and Ossewaarde, JM (2014). Multi-centre evaluation of real-time multiplex PCR for detection of carbapenemase genes OXA-48, VIM, IMP, NDM and KPC. BMC Infect. Dis., 14: 1-5.
Zhao, X; Gao, Y; Ye, C; Yang, L; Wang, T and Chang, W (2016). Prevalence and characteristics of Salmonella isolated from free-range chickens in Shandong Province, China. Biomed. Res. Int., 2016: 1-6.