ارزیابی برون‌تنی و درون‌تنی برخی از ضد میکروب‌ها و ضد عفونی کننده‌ها در برابر پاتوژن‌های باکتریایی از زخم‌های سم در گاو شیری

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: لنگش در گاو شیری در سراسر جهان شیوع دارد و دارای پیامدهای جدی اقتصادی و رفاه حیوانات است. با این وجود، این یک مشکل نادیده گرفته و کم مطالعه شده گاوهای شیری در پاکستان است. هدف: این مطالعه به منظور ارزیابی برخی از ضد میکروب‌ها و ضد عفونی کننده‌ها در شرایط برون‌تنی و درون‌تنیبر پاتوژن‌های باکتریایی از زخم‌های سم در گاوهای شیری تجاری، انجام شد. روش کار: برای مطالعات برون‌تنی، 23 جدایه باکتریایی (تعداد 10 استافیلوکوکوس اورئوس، تعداد 8فوزوباکتریوم نکروفوروم، و تعداد 5 باکتروئیدس) از زخم‌های سم، برای تست حساسیت به ضد میکروب‌ها و ضد عفونی کننده‌ها، استفاده شدند. آزمایش‌های درون‌تنی در میان 4 گروه از گاوهای شیری که از زخم‌های سم رنج می‌بردند، با تجویز ترکیب مختلف ضد میکروب‌ها، داروهای ضد التهاب غیر استروئیدی (NSAIDs) و ضدعفونی کننده‌ها به صورت موضعی یا تزریقی انجام شد. نتایج: نتایج نشان داد که بیشتر جدایه‌های استافیلوکوکوس اورئوس، فوزوباکتریوم نکروفوروم و باکتروئیدس به پنی‌سیلین، آموکسی‌سیلین، تریمتوپریم + سولفامتوکسازول، اکسی تتراسیکلین و تایلوزین مقاوم بودند. سیپروفلوکساسین و جنتامایسین موثرترین ضد میکروب‌ها (برون‌تنی) علیه هر 3 پاتوژن باکتریایی بودند. مقایسه کارآیی ضدعفونی کننده‌ها در شرایط درون‌تنی نشان داد که سولفات مس موثرترین ضد عفونی کننده در برابر هر 3 عامل پاتوژن و به بعد از آن پوویدون آیداین و کلروکسیلنول بیشترین اثر را دارند. آزمایش‌های درون‌تنی نشان داد که ترکیب سیپروفلوکساسین (5 میلی‌گرم/کیلوگرم/روز به صورت عضلانی (IM) به مدت 7 روز)، فلونکسین‌ مگلومین (2/2 میلی‌گرم/کیلوگرم/روز به صورت IM به مدت 7 روز)، و سولفات مس (محلول 5%) به عنوان حمام سم 2 بار در روز به مدت 21 روز موثرترین رژیم درمانی برای درمان لنگش در گاوهای شیری تجاری است. نتیجه‌گیری: نتیجه گرفته شد که آنتی بیوگرام در شرایط برون‌تنی و همچنین مطالعات ضد عفونی کننده‌ها ابزارهای مفیدی برای ارزیابی اثر بخشی ضد میکروب‌ها و ضد عفونی کننده‌های رایج استفاده شده برای درمان لنگش هستند.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Alawneh, J; Laven, R and Stevenson, M (2012). Interval between detection of lameness by locomotion scoring and treatment for lameness: A survival analysis. Vet. J., 193: 622-625.
Amory, J; Barker, Z; Wright, J; Mason, S; Blowey, R and Green, L (2008). Associations between sole ulcer, white line disease and digital dermatitis and the milk yield of 1824 dairy cows on 30 dairy cow farms in England and Wales from February 2003-November 2004. Prev. Vet. Med., 83: 381-391.
Bergey, DH; Krieg, NR and Holt, JG (1984). Bergey’s manual of systematic bacteriology. Williams & Wilkins Publishers, Baltimore, USA.
Bicalho, RC; Cheong, SH; Cramer, G and Guard, CL (2007). Association between a visual and an automated locomotion score in lactating Holstein cows. J. Dairy Sci., 90: 3294-3300.
Blowey, R and Sharp, M (1988). Digital dermatitis in dairy cattle. Vet. Record., 122: 505-508.
Booth, CJ; Warnick, LD; Grohn, YT; D. Maizon, O; Guard, CL and Janssen, D (2004). Effect of lameness on culling in dairy cows. J. Dairy Sci., 87: 4115-4122.
Cappuccino, JG and Sherman, N (2014). Microbiology: a laboratory manual. 7th Edn., San Franciso, USA, Benjamin Cummings Publishers of Pearosn Educstors.
CLSI (2002). Performance standards for antimicrobial disk and dilution susceptibility tests for bacteria isolated from animals. 2nd Edn., Approved Atandard M31-A2. National Committee for Clinical Laboratory Standards, Wayne, PA.
Cook, NB; Bennett, TB and Nordlund, KV (2004). Effect of free stall surface on daily activity patterns in dairy cows with relevance to lameness prevalence. J. Dairy Sci., 87: 2912-2922.
Demirkan, I; Murray, R and Carter, S (2000). Skin diseases of the bovine digit associated with lameness. Vet. Bull., 70: 149-171.
El-Shorbagy, MM; Nasr, EM and Maghawry, MA (2008). Minimum inhibitory concentrations for selected antimicrobial agents against Fusobacterium necrophorum isolated from bovine hepatic abscesses. Egypt. J. Comp. Path. Clinic. Path., 21: 176-190.
Fjeldaas, T; Knappe-Poindecker, M; Bøe, K and Larssen, R (2014). Water footbath, automatic flushing, and disinfection to improve the health of bovine feet. J. Dairy Sci., 97: 2835-2846.
Green, L; Huxley, J; Banks, C and Green, MJ (2014). Temporal associations between low body condition, lameness and milk yield in a UK dairy herd. Prev. Vet. Med., 113: 63-71.
Hernandez, JA; Garbarino, EJ; Shearer, JK; Risco, CA and Thatcher, WW (2005). Comparison of milk yield in dairy cows with different degrees of lameness. J. Am. Vet. Med. Assoc., 227: 1292-1296.
Hernandez, J; Shearer, JK and Webb, DW (2001). Effect of lameness on the calving-to-conception interval in dairy cows. J. Am. Vet. Med. Assoc., 218: 1611-1614.
Kumar, R; Kataktalware, MA; Senani, S; Sivaram, M and Ramesha, K (2019). Risk factors associated with incidence of hoof disorders in cross bred dairy cattle under field conditions. Int. J. Curr. Microbiol. App. Sci., 8: 2284-2292.
Larson, EL and Morton,HE (1991). Alcohols. In: Block, SS (Ed.), Disinfection, sterilization, and preservation. (4th Edn.), Philadelphia, Pa, Lea & Febiger. PP: 191-203.
Laven, R and Logue, D (2006). Treatment strategies for digital dermatitis for the UK. Vet. J., 171: 79-88.
Laven, R and Proven, M (2000). Use of an antibiotic footbath in the treatment of bovine digital dermatitis. Vet. Rec., 147: 503-506.
Melendez, P; Bartolome, J; Archbald, LF and Donovan, A (2003). The association between lameness, ovarian cysts and fertility in lactating dairy cows. Theriogenology. 59: 927-937.
Ohya, T; Yamaguchi, H; Nii, Y and Ito, H (1999). Isolation of Campylobacter sputorum from lesions of papillomatous digital dermatitis in dairy cattle. Vet. Rec., 145: 316-318.
Read, DH and Walker, RL (1998). Papillomatous digital dermatitis (footwarts) in California dairy cattle: clinical and gross pathologic findings. J. Vet. Diagn. Invest., 10: 67-76.
Read, D; Walker, R; Castro, A; Sundberg, J and Thurmond, M (1992). An invasive spirochaete associated with interdigital papillomatosis of dairy cattle. Vet. Rec., 130: 59-60.
Solano, L; Barkema, H; Jacobs, C and Orsel, K (2017). Validation of the M-stage scoring system for digital dermatitis on dairy cows in the milking parlor. J. Dairy Sci., 100: 1592-1603.
Speijers, M; Baird, L; Finney, G; McBride, J; Kilpatrick, D; Logue, D and O’Connell, N (2010). Effectiveness of different footbath solutions in the treatment of digital dermatitis in dairy cows. J. Dairy Sci., 93: 5782-5791.
Stamm, L; Bergen, H and Walker, R (2002). Molecular typing of papillomatous digital dermatitis-associated Treponema isolates based on analysis of 16S-23S ribosomal DNA intergenic spacer regions. J. Clin. Microbiol., 40: 3463-3469.
Tadich, N; Flor, E and Green, L (2010). Associations between hoof lesions and locomotion score in 1098 unsound dairy cows. Vet. J., 184: 60-65.
Teixeira, A; Machado, V; Caixeta, L; Pereira, R and Bicalho, R (2010). Efficacy of formalin, copper sulfate, and a commercial footbath product in the control of digital dermatitis. J. Dairy Sci., 93: 3628-3634.
Thrusfield, M (2005). Veterinary epidemiology. 3rd Edn., Cambridge USA, Black Well Science Ltd., PP: 225-228.
Von Keyserlingk, MA; Rushen, J; de Passille, AM and Weary, DM (2009). Invited review: The welfare of dairy cattle-key concepts and the role of science. J. Dairy Sci., 92: 4101-4111.
Wani, SA; Bhat, MA and Buchh, AS (2003). Antibiogram and bacterial flora’ of pyogenic infections of domestic animals in Kashmir valley. Indian J. Anim. Sci., 73: 384-386.
Watson, C (2007). Lameness in cattle. Crowood Press, Marlborough, UK.