رخداد اولیه هپاتیت همراه با گنجیدگی در غیاب عوامل مستعد کننده در جوجه‌های گوشتی تجاری در ایران: یک گزارش موردی

نوع مقاله : گزارش علمی

نویسندگان

چکیده

پیشینه: آدنوویروس‌های پرندگان (FAdV) که با برخی بیماری‌های بالینی شامل هپاتیت همراه با گنجیدگی (IBH) مرتبط است، از اهمیت بالایی در صنعت طیور برخوردار هستند. در حال حاضر، افزایش تعداد موارد شیوع IBH در بخش‌های مختلف صنایع طیور ایران از جمله نگرانی‌های روز افزون است. ویروس بیماری بورس عفونی (IBDV) یا ویروس کم خونی عفونی ماکیان (CIAV)، از نظر تاریخچه، به عنوان فاکتورهای مستعد کننده برای FAdVs در ایجاد IBH قلمداد شده‌اند. علاوه بر این، حدس زده می‌شود که سویه‌های واکسن IBDV بر تظاهرات بالینی IBH اثر می‌گذارد. مطالعه حاضر به ارزیابی نقش مستعد کننده احتمالی IBDV، CIAV و سویه‌های واکسن بیماری بورس عفونی (IBD) برای FAdV در جریان رخداد بیماری IBH در سطح مزرعه می‌پردازد. توصیف بیمار: نود هزار قطعه جوجه گوشتی یک روزه از گله مادر یکسان، با فاصله زمانی 4 روز در دو مزرعه گوشتی تجاری در شیراز قرار داده شدند. افزایش مرگ ‌و ‌میر همراه با ضایعات هپاتیت، که نشان دهنده ابتلا به IBH است، درست بعد از تجویز کور واکسن IBD در سن 12 روزگی در مزرعه اول شروع شد. به دنبال آن، واکسیناسیون در برابر IBD برای جوجه‌های به ظاهر سالم که در مزرعه دیگر جهت رخداد IBH مورد بررسی قرار گرفته بودند، به تعویق افتاد. آزمون‌های آزمایشگاهی هیستوپاتولوژی و واکنش زنجیره‌ای پلیمراز (PCR) بر روی نمونه‌های کبد، بورس کلوآکی و تیموس انجام شد تا عوامل دخیل FAdV، IBDV و CIAV در رخداد این بیماری، تعیین شود. یافته‌ها/درمان و نتیجه درمان: هیچ نشانه‌ای مبنی بر نقش مستعد کننده واکسیناسیون IBD یا ابتلا به عفونت IBDV/CIAV در این مورد از وقوع IBH یافت نشد. همچنین نتایج نشان داد که FAdV-11 به عنوان عامل اصلی در ایجاد بیماری IBH می‌باشد. نتیجه‌گیری: یافته‌ها نشان می‌دهد که برخی از FAdV بیماری‌زا هستند و به صورت اولیه موجب IBH در جوجه‌های گوشتی جوان می‌شوند.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Christensen, NH and Saifuddin, M (1989). A primary epidemic of inclusion body hepatitis in broilers. Avian Dis., 33: 622-630.
Fadly, AM; Winterfield, R and Olander, HJ (1976). Role of the bursa of Fabricius in the pathogenicity of inclusion body hepatitis and infectious bursal disease viruses. Avian Dis., 20: 467-477.
Gomis, S; Goodhope, R; Ojkic, D and Willson, P (2006). Inclusion body hepatitis as a primary disease in broilers in Saskatchewan, Canada. Avian Dis., 50: 550-555.
Helmboldt, CF and Frazier, MN (1963). Avian hepatic inclusion bodies of unknown significance. Avian Dis., 7: 446-450.
Hess, M (2013). Aviadenovirus infections. In: Swayne, DE; Glisson, JR; McDougald, LR; Nolan, LK; Suarez, DL and Nair, V (Eds.), Diseases of poultry. (13th Edn.), Ames, Wiley-Blackwell. PP: 290-300.
Hoerr, FJ (2010). Clinical aspects of immunosuppression in poultry. Avian Dis., 54: 2-15.
Hosseini, H and Morshed, R (2012). Molecular identification of fowl adenovirus associated with inclusion body hepatitis in Iran. Iran J. Virol., 6: 7-12.
Khodakaram-Tafti, A; Asasi, K and Namazi, F (2016). Clinicopathological characteristics of acute inclusion body hepatitis outbreak in broiler chickens in Iran. Bulg. J. Vet. Med., 19: 163-168.
Lim, TH; Lee, HJ; Lee, DH; Lee, YN; Park, JK; Youn, HN; Kim, MS; Youn, HS; Lee, JB; Park, SY; Choi, IS and Song, CS (2011). Identification and virulence characterization of fowl adenoviruses in Korea. Avian Dis.,
55: 554-560.
Lin, TL; Wu, CC; Rosenberger, JK and Saif, YM (1994). Rapid differentiation of infectious bursal disease virus serotypes by polymerase chain reaction. J. Vet. Diagn. Invest., 6: 100-102.
Meulemans, G; Boschmans, M; Van den Berg, TP and Decaesstecker, M (2001). Polymerase chain reaction combined with restriction enzyme analysis for detection and differentiation of fowl adenoviruses. Avian Pathol., 30: 655-660.
Morshed, R; Hosseini, H; Langeroudi, AG; Fard, MHB and Charkhkar, S (2017). Fowl adenoviruses D and E cause inclusion body hepatitis outbreaks in broiler and broiler breeder pullet flocks. Avian Dis., 61: 205-210.
Nakamura, K; Mase, M; Yamamoto, Y; Takizawa, K; Kabeya, M; Wakuda, T; Matsuda, M; Chikuba, T; Yamamoto, Y; Ohyama, T; Takahashi, K; Sato, N; Akiyama, N; Honma, H and Imai, K (2011). Inclusion body hepatitis caused by fowl adenovirus in broiler chickens in Japan, 2009-2010. Avian Dis., 55: 719-723.
Nateghi, E; Razmyar, J and Bassami, MR (2014). Molecular characterization of avian adenoviruses in Iranian broiler flocks. Iran. J. Vet. Res., 15: 164-167.
Reece, RL; Barr, DA; Grix, DC; Forsyth, WM; Condron, RJ and Hindmarsh, M (1986). Observations on naturally occurring inclusion body hepatitis in Victorian chickens. Aust. Vet. J., 63: 201-202.
Rosenberger, JK; Eckroade, RJ; Klopp, S and Krauss, WC (1974). Characterization of several viruses isolated from chickens with inclusion body hepatitis and aplastic anemia. Avian Dis., 18: 399-409.
Schachner, A; Matos, M; Grafl, B and Hess, M (2018). Fowl adenovirus-induced diseases and strategies for their control–a review on the current global situation. Avian Pathol., 47: 111-126.
Steer, PA; O’Rourke, D; Ghorashi, SA and Noormohammadi, AH (2011). Application of high-resolution melting curve analysis for typing of fowl adenoviruses in field cases of inclusion body hepatitis. Aust. Vet. J., 89: 184-192.
Steer, PA; Sandy, JR; O’Rourke, D; Scott, PC; Browning, GF; Noormohammadi, AH (2015). Chronological analysis of gross and histological lesions induced by field strains of fowl adenovirus serotypes 1, 8b and 11 in one-day-old chickens. Avian Pathol., 44: 106-113.
Todd, D; Mawhinney, KA and McNulty, MS (1992). Detection and differentiation of chicken anemia virus isolates by using the polymerase chain reaction. J. Clin. Microbiol., 30: 1661-1666.
Toro, H; Gonzalez, C; Cerda, L; Hess, M; Reyes, E and Geisse, C (2000). Chicken anemia virus and fowl adenoviruses: association to induce the inclusion body hepatitis/hydropericardium syndrome. Avian Dis., 44: 51-58.