شناسایی هیستوپاتولوژی، سرولوژی، مولکولی و میکروسکوپ الکترونی عفونت مدی-ویزنا در جمعیت گوسفندان در غرب ایران

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: مدی-ویزنا (MV) بیماری لنفوپرولیفراتیو ویروسی پیشرونده است که باعث درگیر شدن چندین اندام در نشخوارکنندگان کوچک از جمله گوسفند و بز می‌شود. این بیماری عمدتاً در بافت ریه اتفاق می‌افتد و باعث ایجاد پنومونی بینابینی می‌گردد. هدف: هدف از مطالعه حاضر، بررسی شیوع عفونت MV در جمعیت گوسفندان ایرانی از طریق آزمون‌های ماکروسکوپی، هیستوپاتولوژی، سرولوژی، مولکولی و نیز میکروسکوپ الکترونی عبوری (TEM) می‌باشد. روش کار: نمونه‌های ریه و خون از 100 راس گوسفند ماده (دو یا بالای دو سال) با علایم بیماری تنفسی که به کشتارگاه کرمانشاه ارجاع داده شده بودند، جمع آوری و مورد ارزیابی هیستوپاتولوژی و مولکولی قرار گرفت. نمونه‌های سرم نیز جهت انجام آزمایش سرولوژی جمع آوری شدند. نتایج: بررسی هیستوپاتولوژی حاکی از وجود جراحت‌های ریوی شبه مدی در 85% از ریه‌های درگیر بود، که شامل پنومونی بینابینی، هیپرتروفی عضلات صاف دیواره آلوئول‌ها و پیرامون عروق خونی، نفوذ لنفوپلاسماسیتک بینابینی و هایپرپلازی لنفاوی فولیکولار بود. آنتی بادی‌های اختصاصی در مقابل ویروس MV در 7% نمونه‌های سرم شناسایی شد. ناحیه تکرار شونده بلند انتهایی (LTR) پروویروس MV در 3% از نمونه‌های DNA استخراج شده از ریه‌های مشکوک، تکثیر یافت. آنالیز تعیین توالی نمونه‌های واکنش زنجیره‌ای پلیمراز (PCR) مثبت، وجود پروویروس MV را در ژنوم تایید کرد. در نمونه‌های DNA استخراج شده از نمونه‌های خون نه در گروه مشکوک و نه در گروه کنترل هیچ تکثیری مشاهده نشد. میکروسکوپ الکترونی عبوری نیز وجود ویریون را در غشا سیتوپلاسمی ماکروفاژهای آلوده به MV تایید کرد. نتیجه‌گیری: اگرچه هیستوپاتولوژی می‌تواند امکان تخمین اولیه مدی در جمعیت را فراهم کند، تشخیص قطعی بیماری نیاز به تایید شدن توسط روش‌هایی با حساسیت بالاتر نظیر آزمایش‌های سرولوژی و آنالیز مولکولی دارد.

کلیدواژه‌ها

مراجع

Asadpour, R; Paktinat, S; Ghassemi, F and Jafari, R (2014). Study on correlation of Maedi-Visna virus (MVV) with ovine subclinical mastitis in Iran. Indian J. Microbiol., 54: 218-222.
Azizi, S; Tajbakhsh, E; Fathi, F; Oryan, A; Momtaz, H and Goodarzi, M (2012). Maedi in slaughtered sheep: a pathology and polymerase chain reaction study in southwestern Iran. Trop. Anim. Health Prod., 44: 113-118.
Beigi Borujeni, N; Pourmahdi Borujeni, M; Hajikolaei, MR and Saify Abad Shapouri, MR (2015). Seroprevalence of Maedi-Visna in sheep in Khuzestan province. Iran. Vet. J., 11: 34-43.
Benavides, J; Fuertes, M; Garcia-Pariente, C; Otaola, J; Delgado, L; Giraldez, J; Marín, JFG; Ferreras, MC and Pérez, V (2013). Impact of Maedi-Visna in intensively managed dairy sheep. Vet. J., 197: 607-612.
Brinkhof, JM; Houwers, DJ; Moll, L; Dercksen, D and van Maanen, C (2010a). Diagnostic performance of ELISA and PCR in identifying SRLV-infected sheep and goats using serum, plasma and milk samples and in early detection of infection in dairy flocks through bulk milk testing. Vet. Microbiol., 142: 193-198.
Brinkhof, JM; Moll, L; van Maanen, C and Houwers, DJ (2010b). Use of serology and polymerase chain reaction for the rapid eradication of small ruminant lentivirus infections from a sheep flock: a case report. Res. Vet. Sci., 88: 41-43.
Brinkhof, JM; van Maanen, C; Wigger, R; Peterson, K and Houwers, DJ (2008). Specific detection of small ruminant lentiviral nucleic acid sequences located in the proviral long terminal repeat and leader-gag regions using real-time polymerase chain reaction. J. Virol. Methods. 147: 338-344.
Carrozza, ML; Mazzeim, M; Bandecchi, P; Fraisier, C; Perez, M; Suzan-Monti, M; de Andrés, D; Amorena, B; Rosati, S; Andrésdottir, V and Lujan, L (2010). Development and comparison of strain specific gag and pol real-time PCR assays for the detection of Maedi-Visna virus. J. Virol. Methods. 165: 161-167.
Caswell, JL and Williams, KJ (2016). Respiratory system. In: Maxie, MG (Ed.), Jubb, Kennedy and Palmer’s pathology of domestic animals. (6th Edn.), Vol. 2, Philadelphia, Elsevier. PP: 558-560.
Crespo, H; Bertolotti, L; Proffiti, M; Cascio, P; Cerruti, F; Acutis, PL; De Andrés, D; Reina, R and Rosati, S (2016). Low proviral small ruminant lentivirus load as biomarker of natural restriction in goats. Vet. Microbiol., 192: 152-162.
De Andres, D; Klein, D; Watt, NJ; Berriatua, E; Torsteinsdottir, S; Blacklaws, BA and Harkiss, GD
(2005). Diagnostic tests for small ruminant lentiviruses. Vet. Microbiol., 107: 49-62.
De Souza, TS; Pinheiro, RR; Costa, JN; Lima, CC; Andrioli, A; Azevedo, DA; dos Santos, VW; Araújo, JF; Sousa, ALMD; Pinheiro, DN and Fernandes, F (2015). Interspecific transmission of small ruminant lentiviruses from goats to sheep. Braz. J. Microbiol., 46: 867-874.
Extramiana, AB; Gonzalez, L; Cortabarria, N; Garcia, M and Juste, RA (2002). Evaluation of a PCR technique for the detection of Maedi-Visna proviral DNA in blood, milk and tissue samples of naturally infected sheep. Small Rum. Res., 44: 109-118.
Fournier, D; Campbell, JR and Middleton, DM (2006). Prevalence of Maedi-Visna infection in culled ewes in Alberta. Can. Vet. J., 47: 460-466.
Herrmann-Hoesing, LM (2010). Diagnostic assays used to control small ruminant lentiviruses. J. Vet. Diagn. Invest., 22: 843-855.
Lago, N; Lopez, C; Panadero, R; Cienfuegos, S; Pato, J; Prieto, A; Diaz, P; Mourazos, N and Fernandez, G (2012). Seroprevalence and risk factors associated with Maedi-Visna virus in semi-intensive lamb-producing flocks in northwestern Spain. Prev. Vet. Med., 103: 163-169.
Leginagoikoa, I; Minguijon, E; Juste, RA; Barandika, J; Amorena, B; de Andres, D; Badiola, JJ; Luján, L and Berriatua, E (2010). Effects of housing on the incidence of Visna/Maedi virus infection in sheep flocks. Res. Vet. Sci., 88: 415-421.
Minardi da Cruz, JC; Singh, DK; Lamara, A and Chebloune, Y (2013). Small ruminant lentiviruses (SRLVs) break the species barrier to acquire new host range. Viruses. 5: 1867-1884.
Minguijon, E; Reina, R; Pérez, M; Polledo, L; Villoria, M; Ramírez, H; Leginagoikoa, I; Badiola, JJ; García-Marín, JF; De Andrés, D and Luján, L (2015). Small ruminant lentivirus infections and diseases. Vet. Microbiol., 181: 75-89.
Muz, D; Oğuzoğlu, TC; Rosati, S; Reina, R; Bertolotti, L and Burgu, I (2013). First molecular characterization of Visna/Maedi viruses from naturally infected sheep in Turkey. Arch. Virol., 158: 559-570.
Norouzi, B; Taghavi Razavizadeh, A; Azizzadeh, M; Mayameei, A and Najar Nezhad Mashhadi, V (2015).
Serological study of small ruminant lentiviruses in sheep population of Khorasan-e-Razavi province in Iran. Vet. Res. Forum., 6: 245-249.
Nowicka, D; Czopowicz, M; Bagnicka, E; Rzewuska, M; Strzałkowska, N and Kaba, J (2015). Influence of small ruminant lentivirus infection on cheese yield in goats. J. Dairy Res., 82: 102-106.
Oguma, K; Tanaka, C; Harasawa, R; Kimura, A; Sasaki, J; Goryo, M and Sentsui, H (2014). Isolation of Maedi/ Visna virus from a sheep in Japan. J. Vet. Med. Sci., 76: 211-218.
Pepin, M; Vitu, C; Russo, P; Mornex, JF and Peterhans, E (1998). Maedi-Visna virus infection in sheep: a review. Vet. Res., 29: 341-367.
Peterhans, E; Greenland, T; Badiola, J; Harkiss, G; Bertoni, G; Amorena, B; Eliaszewicz, M; Juste, RA; Kraßnig, R; Lafont, JP and Lenihan, P (2004). Routes of transmission and consequences of small ruminant lentiviruses (SRLVs) infection and eradication schemes. Vet. Res., 35: 257-274.
Preziuso, S; Magi, GE; Mari, S and Renzoni, G (2013). Detection of Visna Maedi virus in mesenteric lymph nodes and in other lymphoid tissues of sheep three years after respiratory infection. Vet. Med., 58: 359-363.
Sakhaee, E and Khalili, M (2010). Serological study of Maedi-Visna virus among sheep flocks in Kerman province of Iran. Iran. J. Virol., 4: 29-33.
Sasani, F; Javanbakht, J; Hemmatzadeh, F; Rajabi-Moghadam, M and Aghamohammad Hassan, M (2013). Evaluation of histopathological on Maedi disease with serological confirmation in North-East of Iran. Res. J. Infect. Dis., https://doi.org/ 10.7243/2052-5958-1-5.
Sayari, M and Lotfi, M (2001). Serological and pathological study of Maedi in sheep’s lung in Ahvaz. J. Vet. Res., 53: 91-94.
Villoria, M; Leginagoikoa, I; Lujan, L; Perez, M; Salazar, E; Berriatua, E; Juste, RA and Minguijón, E (2013). Detection of small ruminant lentivirus in environmental samples of air and water. Small Rum. Res., 110: 155-160.
Zhang, K; He, J; Liu, Y; Shang, Y and Liu, X (2013). A seroprevalence survey of Maedi-Visna among twenty-four ovine floks from twelve regions of China. J. Integr. Agric., 12: 2321-2323.

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار