ارزیابی اینترفرون‌های نوعI ، نشانه‌های بالینی و دفع ویروس در جوجه‌های گوشتی واکسینه شده قبل و پس از چالش بیماری نیوکاسل

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: بیماری نیوکاسل (ND) منجر به خسارات اقتصادی ویرانگر به صنعت طیور می‌شود. هدف: این مطالعه اثر احتمالی واکسیناسیون قبل و پس از چالش، به وسیله یک واکسن تجاری زنده، روی برخی جنبه‌های پاتوژنیک عفونت ویروس حاد بیماری نیوکاسل (vNDV) در ماکیان گوشتی، با تاکید بر روشن کردن روند پاسخ اینترفرون‌های (IFNs) نوع I، را مورد ارزیابی قرار می‌دهد. روش کار: جوجه‌ها (250 قطعه) به صورت تصادفی به 5 گروه مساوی شامل گروه کنترل منفی (NC)، گروه کنترل مثبت (PC) (چالش داده شده با vNDV)، و گروه‌های درمان      (T1-T3): (T1) دریافت کننده سویه ویلگاس-گلیسون/دانشگاه جورجیا (VG/GA) واکسن NDV به تنهایی، (T2) واکسینه شده 24 ساعت قبل از چالش با vNDV، و (T3) واکسینه شده 24 ساعت پس از چالش با ویروس vNDV، تقسیم شدند. نمونه‌ها از نای، محتویات کلوآک و سرم در زمان‌های مختلف جهت ارزیابی دفع ویروس یا سطح IFNs جمع آوری شدند. نتایج: هر چند نشانه‌های بالینی و جراحت‌ها به طور کامل توسط واکسیناسیون قبل و بعد از چالش با vNDV متوقف نشدند، اما کاهش شدت بیماری از طریق افزایش میزان زنده مانی و متوسط روزهای زنده ماندن (MSDs) پرندگان نشان داده شد. همچنین واکسیناسیون قبل و بعد از چالش با واکسن زنده VG/GA باعث تغییر در الگوی دفع ویروس، به خصوص از طریق کاهش دوره دفع vNDV به ویژه از دستگاه گوارش (GI) گردید. پاسخ شدید اولیه IFNs نوع I در نای و سرم جوجه‌ها واکسینه شده قبل و بعد از عفونت (pi) در مقایسه با پرندگان دریافت کننده واکسن یا vNDV به تنهایی مشاهده شد. در نای، پاسخ IFN-α نسبت به IFN-β قوی‌تر بود، در حالی که هر دو IFNs تغییرات قابل ملاحظه در سرم نشان دادند. نتیجه‌گیری: به نظر می‌رسد واکسیناسیون پس از چالش با vNDV می‌تواند سلامت پرنده را همانند واکسیناسیون قبل از چالش، بهبود بخشیده و احتمالا از طریق تولید IFNs نوع I منجر به کاهش دفع ویروس شود.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Abdisa, T and Tagesu, T (2017). Review on Newcastle disease in poultry and its public health importance. J. Vet. Sci. Technol., 8(3).
Absalon, AE; Cortes-Espinosa, DV; Lucio, E; Miller, PJ and Afons, CL (2019). Epidemiology, control, and prevention of Newcastle disease in endemic regions: Latin America. Trop. Anim. Health Prod., 51: 1033-1048.
Ahmed, KA; Saxena, VK; Ara, A; Singh, KB; Sundaresan, NR; Saxena, M and Rasool, TJ (2007). Immune response to Newcastle disease virus in chicken lines divergently selected for cutaneous hypersensitivity. Int. J. Immunogenet., 34: 445-455.
Alexander, DJ; Aldous, EW and Fuller, CM (2012). The long view: a selective review of 40 years of Newcastle disease research. Avian Pathol., 41: 329-335.
Al-Garib, SO; Gielkens, AL; Gruys, DE; Hartog, L and Koch, G (2003). Immunoglobulin class distribution of systemic and mucosal antibody responses to Newcastle disease in chickens. Avian Dis., 47: 32-40.
Dimitrov, KM; Afonso, CL; Yu, Q and Miller, PJ (2017). Newcastle disease vaccines-A solved problem or a continuous challenge? Vet. Microbiol., 206: 126-136.
Ghalyanchilangeroudi, A; Hosseini, H; Jabbarifakhr, M; Fallah Mehrabadi, MH; Najafi, H; Ghafouri, SA; Mousavi, FS; Ziafati, Z and Modiri, A (2018). Emergence of a virulent genotype VIIi of Newcastle disease virus in Iran. Avian Pathol., 47: 509-519.
Kant, A; Koch, G; Van Roozelaar, DJ; Balk, F and Huurne, AT (1997). Differentiation of virulent and non-virulent strains of Newcastle disease virus within 24 hours by polymerase chain reaction. Avian Pathol., 26: 837-849.
Kapczynski, DR; Afonso, CL and Miller, PJ (2013). Immune responses of poultry to Newcastle disease virus. Dev. Comp. Immunol., 41: 447-453.
Karpala, AJ; Bingham, J; Schat, KA; Chen, LM; Donis, RO; Lowenthal, JW and Bean, AG (2011). Highly pathogenic (H5N1) avian influenza induces an inflammatory T helper type 1 cytokine response in the chicken. J. Interferon Cytokine Res., 31: 393-400.
Li, X and Hanson, RP (1989). In vivo interference by Newcastle disease virus in chickens, the natural host of the virus. Arch. Virol., 108: 229-245.
Liu, WQ; Tian, MX; Wang, YP; Zhao, Y; Zou, NL; Zhao, FF; Cao, SJ; Wen, XT; Liu, P and Huang, Y (2012). The different expression of immune-related cytokine genes in response to velogenic and lentogenic Newcastle disease viruses infection in chicken peripheral blood. Mol. Biol. Rep., 39: 3611-3618.
Lomniczi, B (1973). Studies on interferon production and interferon sensitivity of different strains of Newcastle disease virus. J. Gen. Virol., 21: 305-313.
Mo, CW; Cao, YC and Lim, BL (2001). The in vivo and in vitro effects of chicken interferon alpha on infectious bursal disease virus and Newcastle disease virus infection. Avian Dis., 45: 389-399.
Munir, S; Sharma, JM and Kapur, V (2005). Transcriptional response of avian cells to infection with Newcastle disease virus. Virus Res., 107: 103-108.
Novak, R; Ester, K; Savic, V; Sekellick, MJ; Marcus, PI; Lowenthal, JW; Vainio, O and Ragland, WL (2001). Immune status assessment by abundance of IFN-alpha and IFN-gamma mRNA in chicken blood. J. Interferon Cytokine Res., 21: 643-651.
OIE (2012). Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals: mammals, birds and bees. 7 Edn., Vol. 1, Paris, Biological Standards Commission.
Pei, J; Sekellick, MJ; Marcus, PI; Choi, IS and Collisson, EW (2001). Chicken interferon type I inhibits infectious bronchitis virus replication and associated respiratory illness. J. Interferon Cytokine Res., 21: 1071-1077.
Penski, N; Hartle, S; Rubbenstroth, D; Krohmann, C; Ruggli, N; Schusser, B; Pfann, M; Reuter, A; Gohrbandt, S; Hundt, J; Veits, J; Breithaupt, A; Kochs, G; Stech, J; Summerfield, A; Vahlenkamp, T; Kaspers, B and Staeheli, P (2011). Highly pathogenic avian influenza viruses do not inhibit interferon synthesis in infected chickens but can override the interferon-induced antiviral state. J. Virol., 85: 7730-7741.
Perozo, F; Villegas, P; Dolz, R; Afonso, CL and Purvis, LB (2008). The VG/GA strain of Newcastle disease virus: mucosal immunity, protection against lethal challenge and molecular analysis. Avian Pathol., 37: 237-245.
Qu, H; Yang, L; Meng, S; Xu, L; Bi, Y; Jia, X; Li, J; Sun, L and Liu, W (2013). The differential antiviral activities of chicken interferon alpha (ChIFN-alpha) and ChIFN-beta are related to distinct interferon-stimulated gene expression. PLoS One. 8: e59307.
Reed, LJ and Muench, H (1938). A simple method of estimating fifty per cent endpoints 12. Am. J. Epidemiol., 27: 493-497.
Rue, C; Susta, L; Cornax, I; Brown, CC; Kapczynski, DR; Suarez,DL; King, DJ; Miller, P and Afonso, C (2011). Virulent Newcastle disease virus elicits a strong innate immune response in chickens. J. Gen. Virol., 92: 931-939.
Santhakumar, D; Rubbenstroth, D; Martinez-Sobrido, L and Munir, M (2017). Avian interferons and their antiviral effectors. Front Immunol., 8(49).
Sarcheshmei, M; Dadras, H; Mosleh, N and Mehrabanpour, M (2016). Comparative evaluation of the protective efficacy of different vaccination programs against a virulent field strain of the Newcastle disease virus
in broilers. Braz. J. Poult. Sci., 18: 363-370.
Sick, C; Schultz, U; Münster, U; Meier, J; Kaspers, B and Staeheli, P (1998). Promoter structures and differential responses to viral and nonviral inducers of chicken type I interferon genes. J. Biol. Chem., 273: 9749-9754.
Wajid, A; Basharat, A; Bibi, T and Rehmani, SF (2018). Comparison of protection and viral shedding following vaccination with Newcastle disease virus strains of different genotypes used in vaccine formulation. Trop. Anim. Health Prod., 50: 1645-1651.
Xia, C; Liu, J; Wu, ZG; Lin, CY and Wang, M (2004). The interferon-alpha genes from three chicken lines and its effects on H9N2 influenza viruses. Anim. Biotechnol., 15: 77-88.