شناسایی مایکوپلاسما اوی نومونیه و مایکوپلاسما آرژینینی در گوسفندان مبتلا به پنومونی در شمال شرق ایران

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: پنومونی ناشی از عفونت‌های مایکوپلاسمایی می‌تواند یک مشکل بزرگ از نظر سلامت و زیان‌های اقتصادی در صنعت پرورش نشخوارکنندگان کوچک باشد. هدف: هدف از این مطالعه، جداسازی و شناسایی مایکوپلاسماها در گوسفندانی بود که به طور طبیعی در شمال شرق ایران، به پنومونی مبتلا شده بودند. روش کار: در مطالعه حاضر از روش‌های هیستوپاتولوژی، کشت و واکنش زنجیره‌ای پلیمراز (PCR) جهت ارزیابی نمونه‌های اخذ شده از 50 ریه گوسفند که به طور طبیعی به پنومونی مبتلا شده بودند، استفاده شد. نتایج: از نظر ماکروسکوپی، سفت شدگی غیرمنظم با الگوی لوبولار یا لوبار تا منتشر در لوب‌های قدامی شکمی تا خلفی ریه‌های مبتلا مشاهده شد. از نظر هیستوپاتولوژی، پنومونی برونکواینترستیشیال در 38 (78%) ریه و برونکوپنومونی چرکی تا فیبرینی چرکی در 12 (24%) ریه اخذ شده از گوسفندان مبتلا تشخیص داده شد. از نمونه‌های بافتی ریه DNA استخراج شد و با استفاده از پرایمرهای اختصاصی شناسایی جنس و گونه مایکوپلاسما، تکثیر گردید. در محیط کشت، رشد مایکوپلاسما در 3 ریه (6%) از 50 نمونه بافتی ریه، مشاهده شد. آزمون PCR، DNA مایکوپلاسمایی اختصاصی جنس را در 12 نمونه (24%) مشخص ساخت. از این 12 نمونه، به ترتیب 2 (4%) و 7 (14%) نمونه با پرایمرهای اختصاصی گونه مایکوپلاسما اوی نومونیه و مایکوپلاسما آرژینینی واکنش مثبت نشان دادند. نتیجه‌گیری: نتایج نشان داد که هر دو گونه مایکوپلاسما اوی نومونیه و مایکوپلاسما آرژینینی از عواملی هستند که می‌توانند در ایجاد سفت شدگی ریه و پنومونی دخیل باشند و آزمون PCR جهت شناسایی مایکوپلاسما موفقیت آمیزتر از روش کشت بود.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Abtin, AR; Pourbakhsh, SA; Ashtari, A; Bayatzadeh, MA; Barani, SM and Ahangaran, S (2013). Isolation and identification of Mycoplasma agalactiae by culture and polymerase chain reaction (PCR) from sheep of Qom province, Iran. Arch. Razi Inst., 68: 11-16.
Adehan, RK; Ajuwape, ATP; Adetosoye, AI and Alaka, OO (2006). Characterization of Mycoplasmas isolated from pneumonic lungs of sheep and goats. Small Rum. Res., 63: 44-49.
Amores, J; Corrales, JC; Martin, AG; Sanchez, A and Conteras, A (2010). Comparison of culture and PCR to detect Mycoplasma agalactiae and Mycoplasma mycoides subsp. capri in ear swabs taken from goats. Vet. Microbiol., 140: 105-108.
Ayling, RD; Bashiruddin, SE and Nicholas, RAJ (2004). Mycoplasma species and related organisms isolated from ruminants in Britain between 1999 and 2000. Vet. Rec., 155: 413-416.
Ayling, RD and Nicholas, RAJ (2007). Mycoplasma respiratory infections. In: Aitken, ID (Ed.), Diseases of sheep. (4th Edn.), Oxford, UK, Blackwell Publishing Inc., PP: 231-235.
Azizi, S; Tajbakhsh, E; Rezaii, SH; Nekouei, SH and Namjoo, AR (2011). The role of Mycoplasma ovipneumoniae and Mycoplasma arginini in pneumonic lungs of slaughtered sheep. Rev. Med. Vet-Toulouse. 162: 310-315.
Carmichael, LE; St. George, TD; Sullivan, ND and Horsfall, N (1992). Isolation, propagation and characterization studies of an ovine Mycoplasma responsible for proliferative interstitial pneumonia. Cornell Vet., 62: 654-679.
Chazel, M; Tardy, F; Grand, DL; Calavas, D and Poumarat, F (2010). Mycoplasmoses of ruminants in France: recent data from the national surveillance network. BMC Vet. Res., 6: 32-39.
Cremonesi, P; Vimercati, C; Pisoni, G; Perez, G; Miranda Ribera, A; Castiglioni, B; Luzzana, M; Ruffo, G and Moroni, P (2007). Development of DNA extraction and PCR amplification protocols for detection of Mycoplasma bovis directly from milk samples. Vet. Res. Communi., (Suppl. 1), 31: 225-227.
Elfaki, MG; Abbas, B; Mahmoud, OM and Kleven, SH (2002). Isolation and characterization of Mycoplasma arginini from camels (Camelus dromedarius) with pneumonia. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis., 25: 49-57.
Ettorre, C; Sacchini, F; Scacchia, M and Salda, LD (2007). Pneumonia of lambs in the Abruzzo region of Italy: anatomopathological and histopathological studies and localization of Mycoplasma ovipneumoniae. Vet. Ital., 43: 149-155.
Fernandez, S; Galapero, J; Rey, J; Perez, CJ; Ramos, A; Rosales, R; Ayling, R; Alonso, JM and Gomes, L (2016) Investigations into the seasonal presence of Mycoplasma
species in fattening lambs. Vet. J., 212: 80-82.
Gagea, MI; Bateman, KG; Shanahan, RA; van Druemel, T; McEwen, BJ; Carman, S; Archambault, M and Caswell, JL (2006). Naturally occurring Mycoplasma bovis-associated pneumonia and polyarthritis in feedlot calves. J. Vet. Diagn. Invest., 18: 29-40.
Goncalves, R; Mariano, I; Núñez, A; Branco, S; Fairfoul, G and Nicholas, R (2010). Atypical non-progressive pneumonia in goats. Vet. J., 183: 219-221.
Gutierrez, C; Rodriguez, JL; Montoya, JA and Fernandez, A (1999). Clinicopathological and haematological findings in goat kids experimentally infected simultaneously with Mycoplasma mycoides subsp. capri and Mycoplasma mycoides subsp. mycoides (large colony-type). Small Rum. Res., 31: 187-192.
Haziroglu, R; Diker, KS; Gulbahar, MY; Akan, M and Guvenc, T (1994). Studies of the pathology and microbiology of pneumonic lungs of lambs. Dtsch. Tierarztl. Wochenschr., 101: 441-443.
Kheirkhah, B; Pourbakhsh, SA; Nadalian, MG; Banani, M and Ashtari, A (2011). Detection of Mycoplasma agalactiae by culture and polymerase chain reaction (PCR) methods from Iranian goats. Afr. J. Microbiol. Res., 5: 1668-1672.
Kılıc, A; Kalender, H; Eroksuz, H; Muz, A and Tasdemir, B (2013). Identification by culture, PCR, and immuno-histochemistry of Mycoplasmas and their molecular typing in sheep and lamb lungs with pneumonia in Eastern Turkey. Trop. Anim. Health Prod., 45: 1525-1531. doi: 10.1007/s11250-013-0394-3.
Lopez, A and Martinson, SA (2017). Respiratory system, mediastinum and pleura. In: Zachery, JF (Ed.), Pathologic basis of veterinary disease. (6th Edn.), Vol. 1, Saint louis, Missouri, Elsevier Inc., PP: 538-539.
McAuliffe, L; Hatchell, FM; Ayling, RD; King, AI and Nicholas, RA (2003). Detection of Mycoplasma ovipneumoniae in Pasteurella-vaccinated sheep flocks with respiratory disease in England. Vet. Rec., 153: 687-688.
Mohan, K; Obowolo, MJ and Hill, PWG (1992). Mycoplasma ovipneumoniae infection in Zimbabwe goats and sheep. J. Comp. Pathol., 107: 73-79.
Niang, M; Rosenbusch, RF; Lopez-Virella, J and Kaeberle, ML (1999). Differential serologic response to Mycoplasma ovipneumoniae and Mycoplasma arginini in lambs affected with chronic respiratory disease. J. Vet. Diagn. Invest., 11: 34-40.
Pooladgar, AR; Looni, R; Ghaemmaghami, SH; Pourbakhsh, SA; Ashtari, A and Shirudi, A (2015). Isolation and identification of Mycoplasma agalactiae by culture and polymerase chain reaction (PCR) from affected sheep to contagious agalactia of Khuzestan province, Iran. Archives of Razi Institute. 70: 21-27.
Radostits, OM; Gay, CC; Hinchcliff, KW and Constable, PD (2007). Veterinary medicine. A textbook of the disease of cattle, horses, sheep, pigs and goats. 10th Edn., Baillier Tindall, London, Saunders Elsevier. PP: 950-995.
Smith, BP; Van Metre, DC and Pusterla, N (2019). Large animal internal medicine. 6th Edn., United States, Mosby Elsevier. PP: 645-698.
Tola, S; Angioi, A; Rocchigiani, G; Idini, D; Manunta, D; Galleri, G and Leori, G (1997). Detection of Mycoplasma agalactiae in sheep milk samples by polymerase chain reaction. Vet. Microbiol., 54: 17-22.