اثر ایزوفلاون‌های سویا بر شکست لانه گزینی در موش صحرایی ویستار: نقش گیرنده‌های پروژسترون، فاکتور رشد اندوتلیال عروقی و گیرنده‌های آلفای استرادیول

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: لانه گزینی یک مرحله حیاتی تعیین کننده برای موفقیت یک بارداری کامل می‌باشد. به نظر می‌رسد که مختل کننده‌های درون ریز از قبیل فیتواستروژن‌ها (PEs) به طور نامطلوبی بر لانه گزینی رویان تاثیر می‌گذارند. با این وجود، ساز و کاری که از آن طریق لانه گزینی دچار اختلال می‌شود، به طور کامل مشخص نشده است. هدف: اثر تجویز ایزوفلاون‌های سویا بر لانه گزینی در موش صحرایی ویستار از طریق ردیابی گیرنده‌های پروژسترون (PR)، فاکتور رشد اندوتلیال عروقی (VEGF) و بیان پروتئین گیرنده آلفا استرادیول (ER-α) در روز 6 آبستنی (GD6) مورد مطالعه قرار گرفت. روش کار: هجده موش صحرایی ویستار ماده که از نظر جنسی فعال بودند، به 2 گروه تقسیم شدند. گروه A: گروه شاهد (9 عدد) که با جیره مبتنی بر کازئین تغذیه شدند و گروه B (9 عدد): که با جیره مبتنی بر کازئین تغذیه شدند و روزانه از روز صفر آبستنی (GD0) تا GD6 با عصاره 40% ایزوفلاون‌های سویا به مقدار mg/kg 50 گاواژ داده شدند. مصرف خوراک، وزن بدن (BW)، وزن گیری و وزن رحم‌ها ثبت شدند. در پایان GD6 تعداد جسم‌های زرد (CLs) و همچنین نرخ لانه گزینی ثبت شدند. هیستوپاتولوژی و ایمونوهیستوشیمی (IHC) برای PR و VEGF و بیان پروتئین ER-α در رحم‌هایی که لانه گزینی در آن‌ها صورت گرفته بود انجام شد. نتایج: ایزوفلاون‌های سویا به طور معنی‌داری، مصرف خوراک، وزن گیری، وزن رحم، تعداد CL و نرخ لانه گزینی را در موش‌های ماده آبستن تیمار شده، کاهش داد. اندومتریوم موش‌های ماده تیمار شده با سویا تکثیر کمتری در مقایسه با گروه شاهد نشان داد. درصد رنگ گیری ایمنی پروتئین‌های VEGF و PR در موش‌های ماده تیمار شده با سویا نسبت به گروه شاهد به طور معنی‌داری کاهش یافت. با این وجود، میانگین درصد بیان   ER-α در موش‌های ماده تیمار شده با سویا نسبت افزایش معنی‌داری در مقایسه با گروه شاهد نشان داد. نتیجه‌گیری: به نظر می‌رسد شکست‌ لانه گزینی ناشی از ایزوفلاون‌های سویا به دلیل تنظیم رو به پایین PR باشد که منجر به اختلال در کاهش عملکرد ER-α شده و تولید VEGF را کاهش می‌دهد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Achache, H and Revel, A (2006). Endometrial receptivity markers, the journey to successful embryo implantation. Hum. Reprod. Update. 12: 731-746.
Amal, M; Abdoon, A; Ismail, A; Heba, M; Hend, M and Gihan, G (2014). Teratogenic effects of dietary genistein and daidzein are mediated by over regulation of Oct-4 and down regulation of Cdx2 expression in post implantation Albino rat embryos. Int. J. Chem. Environ. Biol. Sci., 2: 129-135.
Amini, L; Tehranian, N; Movahedin, M; Tehrani, FR and Ziaee, S (2015). Antioxidants and management of polycystic ovary syndrome in Iran: a systematic review of clinical trials. Iran. J. Reprod. Med., 13: 1-8.
Bancroft, JD and Gamble, M (2008). Theory and practice of histological techniques. 6th Edn., Churchill Livingstone, UK, Elsevier Health Sciences. PP: 53-134.
Borini, A; Tarozzi, N; Bizzaro, D; Bonu, M; Fava, L; Flamigni, C and Coticchio, G (2006). Sperm DNA fragmentation: paternal effect on early post-implantation embryo development in ART. Hum. Reprod., 21: 2876-2881.
Branham, WS; Dial, SL; Moland, CL; Hass, BS; Blair, RM; Fang, H; Shi, L; Tong, W; Perkins, RG and Sheehan, DM (2002). Phytoestrogens and mycoestrogens bind to the rat uterine estrogen receptor. J. Nutr., 132: 658-664.
Casanova, M; You, L; Gaido, KW; Archibeque-Engle, S; Janszen, DB and Heck, HA (1999). Developmental effects of dietary phytoestrogens in Sprague-Dawley rats and interactions of genistein and daidzein with rat estrogen receptors alpha and beta in vitro. Toxicol. Sci., 51: 236-244.
Cha, J; Sun, X and Dey, SK (2012). Mechanisms of implantation: strategies for successful pregnancy. Nat. Med., 18: 1754-1767.
Chandrareddy, A; Muneyyirci-Delale, O; McFarlane, SI and Murad, OM (2008). Adverse effects of phytoestrogens on reproductive health: a report of three cases. Complement Ther. Clin. Pract., 14: 132-135.
Cline, JM; Register, TC and Clarkson, TB (2002). Comparative effects of tibolone and conjugated equine estrogens with and without medroxyprogesterone acetate on the reproductive tract of female cynomolgus monkeys. Menopause. 9: 242-252.
Douglas, NC; Zimmermann, RC; Tan, QK; Sullivan-Pyke, CS; Sauer, MV; Kitajewski, JK and Shawber, CJ (2014). VEGFR-1 blockade disrupts peri-implantation decidual angiogenesis and macrophage recruitment. Vasc. Cell. 6: 16-26.
Ebaid, HM; Elgawish, RAR; Abdelrazek, HM; Gaffer, G and Tag, HM (2016). Prenatal exposure to soy isoflavones altered the immunological parameters in female rats. Int. J. Toxicol., 35: 274-283.
Elgawish, RAR; Rahman, HGA and Abdelrazek, HMA (2015). Green tea extract attenuates CCl4-induced hepatic injury in male hamsters via inhibition of lipid peroxidation and p53-mediated apoptosis. Toxicol. Rep., 2: 1149-1156.
Gaffer, GG; Elgawish, RA; Abdelrazek, HMA; Ebaid, HM and Tag, HM (2018). Dietary soy isoflavones during pregnancy suppressed the immune function in male offspring albino rats. Toxicol. Rep., 5: 296-301.
Goddard, LM; Murphy, TJ; Org, T; Enciso, JM; Hashimoto-Partyka, MK; Warren, CM; Domigan, CK; McDonald, A; He, H; Sanchez, LA; Allen, NC1; Orsenigo, F; Chao, LC; Dejana, E; Tontonoz, P; Mikkola, HK and Iruela-Arispe, ML (2014). Progesterone receptor in the vascular endothelium triggers physiological uterine permeability pre-implantation. Cell. 156: 549-562.
Helmy, S; Emarah, H and Abdelrazek, H (2014). Estrogenic effect of soy phytoestrogens on the uterus of ovariectomized female rats. Clin. Pharmacol. Biopharm., S2:001 doi:10.4172/2167-065X.S2-001.
Hiremath, SP; Badami, S; Hunasagatta, SK and Patil, SB (2000). Antifertility and hormonal properties of flavones of Striga orobanchioides. Eur. J. Pharmacol., 391: 193-197.
Jefferson, WN; Padilla-Banks, E and Newbold, RR (2005). Adverse effects on female development and reproduction in CD-1 mice following neonatal exposure to the phytoestrogen genistein at environmentally relevant doses. Biol. Reprod., 73: 798-806.
Jefferson, WN; Padilla-Banks, E and Newbold, RR (2006). Studies of the effects of neonatal exposure to genistein on the developing female reproductive system. JAOAC Int., 89: 1189-1196.
Kallela, K; Heinonen, K and Saloniemi, H (1984). Plant oestrogens; the cause of decreased fertility in cows. A case report. Nord Vet. Med., 36: 124-129.
Kodaman, PH; Arici, A and Seli, E (2004). Evidence-based diagnosis and management of tubal factor infertility. Curr. Opin. Obstet. Gynecol., 16: 221-229.
Matsumoto, H and Sato, E (2006). Uterine angiogenesis during implantation and decidualization in mice. Reprod. Med. Biol., 5: 81-86.
Meena, R and Sreenivasula Reddy, P (2014). Do phytoestrogens affect reproductive performance in male rats. J. Infertil. Reprod. Biol., 2: 1-5.
Messina, M (2010). A brief historical overview of the past two decades of soy and isoflavone research. J. Nutr., 140: 1350S-1354S.
Morley, F; Axelsen, A and Bennett, D (1966). Recovery of normal fertility after grazing on oestrogenic red clover. Aust. Vet. J., 42: 204-206.
Mueller, MD; Vigne, JL; Minchenko, A; Lebovic, DI; Leitman, DC and Taylor, RN (2000). Regulation of vascular endothelial growth factor (VEGF) gene transcription by estrogen receptors α and β. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 97: 10972-10977.
Norwitz, ER; Schust, DJ and Fisher, SJ (2001). Implantation and the survival of early pregnancy. N. Engl. J. Med., 345: 1400-1408.
Oludare, G and Iranloye, B (2016). Implantation and pregnancy outcome of Sprague-Dawley rats fed with low and high salt diet. Middle East Fertil. Soc. J., 21: 228-235.
Piesta, A; Maj, T and Chełmońska-Soyta, A (2009). The influence of mating on estrogen receptor alpha protein level in spleen and uterine macrophages in female mice. Reprod. Biol., 9: 225-240.
Rabbani, ML and Rogers, PA (2001). Role of vascular endothelial growth factor in endometrial vascular events before implantation in rats. Reproduction. 122: 85-90.
Rockwell, LC; Pillai, S; Olson, CE and Koos, RD (2002). Inhibition of vascular endothelial growth factor/vascular permeability factor action blocks estrogen-induced uterine edema and implantation in rodents. Biol. Reprod., 67: 1804-1810.
Sepehr, E; Cooke, G; Robertson, P and Gilani, GS (2007). Bioavailability of soy isoflavones in rats Part I: application of accurate methodology for studying the effects of gender and source of isoflavones. Mol. Nutr. Food Res., 51: 799-812.
Setchell, KD (2001). Soy isoflavones benefits and risks from nature’s selective estrogen receptor modulators (SERMs). J. Am. Coll. Nutr., 20: 354S-362S.
Soucy, NV; Parkinson, HD; Sochaski, MA and Borghoff, SJ (2005). Kinetics of genistein and its conjugated metabolites in pregnant Sprague-Dawley rats following single and repeated genistein administration. Toxicol. Sci., 90: 230-240.
Spósito, DR; Santos Jr, AR; Spósito, D and Santos Jr, A (2011). Histochemical study of early embryo implantation in rats. Int. J. Morphol., 29: 187-192.
Suzuki, S; Nakashima, N; Kageyama, M and Yamagata, K (2017). A phytoestrogen supplement prevents the altered gene expression associated with pregnancy implantation induced by IL-1β in endometrial epithelial cells. Reprod. Biol., 17: 259-267.
Szkudelska, K; Nogowski, L and Szkudelski, T (2000). Genistein affects lipogenesis and lipolysis in isolated rat adipocytes. J. Steroid Biochem. Mol. Biol., 75: 265-271.
Tan, W; Chen, L; Guo, L; Ou, X; Xie, D and Quan, S (2014). Relationship between macrophages in mouse uteri and angiogenesis in endometrium during the peri-implantation period. Theriogenology. 82: 1021-1027.
Thongon, N; Boonmuen, N; Suksen, K; Wichit, P; Chairoungdua, A; Tuchinda, P; Suksamrarn, A; Winuthayanon, W and Piyachaturawat, P (2017). Selective estrogen receptor modulator (SERM)-like activities of diarylheptanoid, a phytoestrogen from curcuma comosa, in breast cancer cells, pre-osteoblast cells, and rat uterine tissues. J. Agric. Food Chem., 65: 3490-3496.
Wade, GN (1975). Some effects of ovarian hormones on food intake and body weight in female rats. J. Comp. Physiol. Psychol., 88: 183-193.
Wetendorf, M and DeMayo, FJ (2012). The progesterone receptor regulates implantation, decidualization, and glandular development via a complex paracrine signaling network. Mol. Cell. Endocrinol., 357: 108-118.