مطالعه هیستومورفومتریک بر روی تغییرات وابسته به سن در برخی ساختارهای لنفاوی کبک چوکار (الکتوریس چوکار)

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: کبک چوکار (الکتوریس چوکار) به علت ارزش تغذیه‌ای بالا و گوشت نسبتا گرانش پرورش داده می‌شود. هدف: این مطالعه برخی اندام‌های لنفاوی کبک چوکار در سنین قبل تا پیرامون بلوغ را با رهیافت هیستومورفومتریک ارزیابی می‌نماید. روش کار: در این مطالعه 30 قطعه کبک چوکار یک روزه از دو جنس نر و ماده مورد استفاده قرار گرفتند. در سنین 80، 100 و120 (پیرامون بلوغ) از بورس کلواکی، تیموس، طحال، لوزه سکومی (CT)، لوزه پیلور و همچنین لوزه مری نمونه‌گیری انجام شد. ده برش عرضی از هر نمونه اخذ شده از هر پرنده تهیه و با رنگ‌آمیزی هماتوکسیلین و ائوزین (H&E) جهت اندازه‌گیری ارتفاع پلیکا، قطر فولیکول همچنین ضخامت قشر و مرکز فولیکول در بورس کلواکی، طول کرک، قطر واحد فولیکولی (ND) و ارتفاع آن در CT، قطر لوبول، ضخامت قشر و مرکز آن در تیموس، ضخامت پالپ سفید در طحال، قطر فولیکول در لوزه پیلور و لوزه مری گراتیکول خطی مورد استفاده قرار گرفت و تعداد فلیکول‌های هر پلیکا در بورس کلواکی و تعداد فولیکول هر ND در CT، رنگ‌آمیزی و زیر میکروسکوپ نوری ارزیابی شدند. نتایج: تغییرات شدیدی در پارامترهای هیستومورفومتریک بافت‌های لنفاوی در پیرامون بلوغ به ویژه در بورس کلواکی و تیموس دیده شد که به صورت کاهش معنی‌دار در تمام پارامترهای مورد مطالعه نشان داده شد. تحلیل بافتی همچنین در لوزه مری و لوزه پیلور دیده شد. نتیجه‌گیری: تحلیل بافتی در بورس و تیموس در پیرامون بلوغ در مقایسه با مراحل قبل از بلوغ در کبک رخ می‌دهد. این تغییرات همچنین در CT و لوزه پیلور و لوزه مری نیز قابل ملاحظه است در حالی که در طحال تغییر چهره بافتی قبل و پیرامون بلوغ دیده نمی‌شود.

کلیدواژه‌ها


Akbari, MR; Haghighi, HR; Chambers, JR; Brisbin, J; Read, LR and Sharif, S (2008). Expression of antimicrobial peptides in cecal tonsils of chickens treated with probiotics and infected with Salmonella enteric serovar typhimurium. Clin. Vaccine Immunol., 15: 1689-1693.
Arai, N; Hashimoto, Y; Kitagawa, H; Kon, Y and Kudo, N (1988). Immunohistochemical study on the distribution of lymphoid tissues in the upper alimentary and respiratory tracts of chickens. Japan. J. Vet. Sci., 50: 183-192.
Befus, AD; Johnston, N; Leslie, GA and Bienenstock, J (1980). Gut-associated lymphoid tissue in the chicken. J. Immunol., 125: 2626-2632.
Brisbin, JT; Gong, J; Parvizi, P and Sharif, S (2010). Effects of lactobacilli on cytokine expression by chicken spleen and cecal tonsil cells. Clin. Vaccine Immunol., 17: 1337-1343.
Ciriaco, E; Píñera, PP; Díaz-Esnal, B and Laurà, R (2003). Age-related changes in the avian primary lymphoid organs (thymus and bursa of Fabricius). Microsc. Res. Tech., 62: 482-487.
Duke, GE (1986). Alimentary canal: anatomy, regulation of feeding, and motility. In: Sturkie, PD (Ed.), Avian physiology. New York, Springer-Verlag. PP: 269-288.
Guo, Q; Dong, Y; Cao, J; Wang, Z; Zhang, Z and Chen, Y (2015). Developmental changes of melatonin receptor expression in the spleen of the chicken, Gallus domesticus. Acta Histochem., 117: 559-565.
Haghighi, HR; Abdul-Careem, MF; Dara, RA; Chambers, JR and Sharif, S (2008). Cytokine gene expression in chicken cecal tonsils following treatment with probiotics and Salmonella infection. Vet. Microbiol., 126: 225-233.
Nagy, N and Oláh, I (2007). Pyloric tonsil as a novel gut-associated lymphoepithelial organ of the chicken. J. Anat., 211: 407-411.
Oláh, I; Nagy, N; Magyar, A and Palya, V (2003). Esophageal tonsil: a novel gut-associated lymphoid organ. Poult. Sci., 82: 767-770.
Onderci, M; Sahin, N; Sahin, K; Cikim, G; Aydin, A; Ozercan, I and Aydín, S (2006). Efficacy of supplementation of alpha-amylaseproducing bacterial culture on the performance, nutrient use and gut morphology of broiler chickens fed a corn-based diet. Poult. Sci., 85: 505-510.
Özcelik, M (1995). World of birds. Sci. Technol., 328: 66-73.
Rezaian, M and Hamedi, S (2007). Histological study of the caecal tonsil in the cecum of 4-6 months of age white leghorn chicks. America. J. Anim. Vet. Sci., 2: 50-54.
Sağsöz, H and Liman, N (2009). Structure of the oesophagus and morphometric, histochemical-immunohistochemical profiles of the oesophageal gland during the post-hatching period of Japanesequails (Coturnixcoturnix japonica). Anat. Histol. Embryol., 38: 330-340.
Samanya, M and Yamauchi, K (2002). Histological alterations of intestinal villi in chickens fed dried Bacillus subtilis var. natto. Comp. Biochem. Physiol., Part A, Mol. Integr. Physiol., 133: 95-104.
Schat, KA; Kaspers, B and Kaiser, P (2014). Avian immunology. 2nd Edn., MA, USA, Academic Press.
Singh, GK; Chauhan, RS and Mishra, UK (2010). Histomorphological development of lymphoid organs in chicken: thymus and bursa of Fabricius. J. Immunol. Immunopathol., 12: 20-28.
Zhang, A; Xu, J; Lai, H; Huang, W; Fang, N and Chen, R (2017). Age-related changes and distribution of T cell markers (CD3 and CD4) and toll-like receptors (TLR2, TLR3, TLR4 and TLR7) in the duck lymphoid organs. Immunobiology. 222: 857-864.
Zhao, S; Jia, Y; Han, D; Ma, H; Shah, SZ; Ma, Y and Teng, K (2016). Influence of the structural development of bursa on the susceptibility of chickens to infectious bursal disease virus. Poult. Sci., 95: 2786-2794.