مقایسه ژن‌های حدت در گونه‌های پروتئوس‌های جدا شده از انسان و لاک پشت‌های خانگی

نوع مقاله : مقاله کوتاه

نویسندگان

چکیده

مطالعه حاضر با هدف بررسی شیوع ژن‌های حدت ureC، rsbA، zapA و mrpA با استفاده از واکنش زنجیره‌ای پلیمراز (PCR) در گونه‌های پروتئوس جدا شده از 5 گونه محبوب تجاری لاک پشت‌های خانگی و مقایسه توالی‌های ژن mrpA در پروتئوس میرابیلیس‌های جدا شده از لاک پشت‌های خانگی با جدایه‌های بالینی انسانی بود. در مجموع 24 عدد جدایه از لاک پشت‌های خانگی شناسایی شد که شامل پروتئوس میرابیلیس (15 مورد)، پروتئوس ولگاریس (7 مورد) و پروتئوس هوسری (2 مورد) بودند. شیوع ژن‌های ureC، rsbA، zapA و mrpA در بین همه گونه‌های جدا شده به ترتیب 7/91%، 50%، 8/45% و 8/45% بود. شباهت‌های درصد میانگین توالی ژن mrpA لاک پشت خانگی پروتئوس میرابیلیس جدا شده از ادرار و تنفس انسان به ترتیب 35/96% و 85/94% بود. شیوع ژن‌های حدت و شباهت بالای توالی ژن mrpA بین پروتئوس میرابیلیس جدا شده از لاک پشت‌های خانگی و انسان نشان داد که هر چند لاک پشت‌های خانگی سالم هستند، این حیوانات می‌توانند انسان را در معرض خطر ابتلا به عفونت‌های ادراری و تنفسی قرار دهند.

کلیدواژه‌ها


Abbas, KF; Jawad, K; Khafaji, AL; Maysaa, S and Shukri, AL (2015). Molecular detection of some virulence genes in Proteus mirabilis isolated from Hillaprovince. Int. J. Res. Stud. in Biosci. (IJRSB)., 3: 85-89.
Ali, HH and Yousif, GM (2015). Detection of some virulence factors genes of Proteus mirablis that isolated from urinary tract infection. Int. J. of Adv. Res., 3: 156-163.
Back, DS; Shin, GW; Wendt, M and Heo, GJ (2016). Prevalence of Salmonella spp. in pet turtles and their environment. Lab. Anim. Res., 32: 166-170.
Barbour, EK; Hajj, ZG; Hamadeh, S; Shaib, HA; Farran, MT; Araj, G; Faroon, O; Barbour, KE; Jirjis, F; Azhar, E; Kumosani, T and Harahesh, S (2012). Comparison of phenotypic and virulence genescharacteristics in human and chicken isolates of Proteus mirabilis. Path. Glob. Health. 106: 352-357.
Bluvias, JE and Eckert, KL (2010). Marine turtle trauma response procedures: a husbandry manual. Wider Caribbean Sea Turtle Conservation Network (WIDER) Technical Report No. 10, Ballwin, Missouri. P: 100.
Dalia, AA (2015). Prevalence of Proteus spp. in some hospitals in Baghdad city. Iraqi. J. Sci., 56: 665-672.
Drzewiecka, D (2016). Significance and roles of Proteus spp. bacteria in natural environments. Microb. Ecol., 72: 741-758.
Harada, K; Niina, A; Shimizu, T; Mukai, Y; Kuwajima, K; Miyamoto, T and Kataoka, Y (2014). Phenotypic and molecular characterization of antimicrobial resistance in Proteus mirabilis isolates from dogs. J. Med. Microbiol., 63: 1561-1567.
Hegazy, WAH (2016). Diclofenac inhibits virulence of Proteus mirabilis isolated from diabetic foot ulcer. Afr. J. of Microbiol. Res., 10: 733-743.
Henriksen, P (1972). Diagnosis and treatment of disease in the turtle. Iowa State Univ. Vet., 34: 8.
Hidalgo-Vila, J; Diaz-Paniagua, C; De Frutos-Escobar, C; Jimenez-Martinez, C and Perez-Santigosa, N (2007). Salmonella in free living terrestrial and aquatic turtles. Vet. Microbiol., 119: 311-315.
Hordijk, J; Schoormans, A; Kwakernaak, M; Duim, B; Broens, E; Dierikx, C; Mevius, D and Wagenaar, JA (2013). High prevalence of fecal carriage of extended spectrum beta-lactamase/AmpC-producing Entero-bacteriaceae in cats and dogs. Front. Microbiol., 4: 242.
Hossain, S; Wimalasena, SHMP and Heo, GJ (2016). Virulence factors and antimicrobial resistance pattern of Citrobacter freundii isolated from healthy pet turtles and their environment. Asi. J. Ani. Vet. Adv., 12: 10-16.
Li, X and Mobley, HL (2002). Vaccines for Proteus mirabilis in urinary tract infection. Int. J. Antimicrob. Agents. 19: 461-465.
Manos, J and Belas, R (2006). The genera Proteus, Providencia, and Morganella. Prokaryotes. 6: 245-269.
Mermin, J; Hutwagner, L; Vugia, D; Shallow, S; Daily, P; Bende, J; Koehler, J; Marcus, R and Angulo, FJ (2004). Reptiles, amphibians, and human Salmonella infection: a population-based, case-control study. Clin. Inf. Dis., 38: 253-261.
Mohammed, SO; Elshahaby, OA; Hafez, EE; Mohammed, AK and Ahmed, E (2014). Characterization and purification of urease enzyme from new Proteus mirabilis strain. J. Adv. Sci. Res., 5: 8-11.
Omoruyia, EA and Evangelista, M (2014). Proteus mirabilis septicemia and meningitis in a neonate. J. Med. Cases. 5: 245-247.
Pearson, MM; Rasko, DA; Smith, SN and Mobley, HL (2010). Transcriptome of swarming Proteus mirabilis. Infect. Immun., 78: 2834-2845.
Rather, PN (2005). Swarmer cell differentiation in Proteus mirabilis. Environ. Microbiol., 7: 1065-1073.
Rocha, SP; Elias, WP; Cianciarullo, AM; Menezes, MA;
Nara, JM; Piazza, RM; Silva, MR; Moreira, CG and Pelayo, JS
(2007). Aggregative adherence of uropathogenic Proteus mirabilis to cultured epithelial cells. FEMS Immunol. Med. Microbiol., 51: 319-326.
Różalski, A; Torzewska, A; Moryl, M; Kwil, I; Maszewska, A; Ostrowska, K; Drzewiecka, D; Zabłotni, A; Palusiak, A; Siwinska, M and Staçzek, P (2012). Proteus spp. an opportunistic bacterial pathogen-classification, swarming growth, clinical significance and virulence factors. Folia Biol. Oeco., 8: 1-17.
Schaffer, JN and Pearson, MM (2015). Proteus mirabilis and urinary tract infections. Microbiol. Spectr., 3(5): UTI-0017-2013. doi: 10.1128/microbiolspec.UTI-0017-2013.
Senior, BW (1997). Media and tests to simplify the recognition and identification of members of the Proteeae. J. Med. Microbiol., 46: 39-44.
Trivedi, KM; Branton, A; Trivedi, D; Nayak, G; Mondal, SC and Jana, S (2015). Phenotyping and genotyping characterization of Proteus vulgaris; after biofield treatment. Int. J. Genetics and Genomics., 3: 66-73.
Walker, KE; Moghaddame-Jafari, S; Lockatell, CV; Johnson, D and Belas, R (1999). ZapA, the IgA-degrading metalloprotease of Proteus mirabilis, is a virulence factor expressed specically in swarmer cells. Mol. Microbiol., 32: 825-836.