آیا عسل طبیعی می‌تواند جایگزینی برای آنتی بیوتیک‌ها در رقیق کننده‌های منی که برای اجماد منی قوچ‌های دو رگه استفاده می‌شوند، باشد؟

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

آنتی بیوتیک‌ها به منظور مراقبت از اسپرم‌ها در برابر بار سنگین میکروبی به رقیق کننده‌های منی اضافه می‌شوند. اما مصرف مداوم آن‌ها تهدید پایداری برای پیدایش مقاومت‌های آنتی بیوتیکی در میکروب‌های رایج موجود در منی است. فرضیه مطالعه ما این بود که آیا عسل طبیعی با داشتن اثر آنتی باکتریال و همچنین فروکتوز فراوان می‌تواند جایگزین مناسبی برای آنتی بیوتیک‌ها و فروکتوز در رقیق کننده‌های منی باشد. تعداد 24 انزال از 6 قوچ دو رگه جمع‌آوری شد و با رقیق کننده‌های بر پایه Tris فاقد عسل (گروه شاهد) و حاوی 5/2% (T1)، 5% (T2) و 7% (T3) عسل، رقیق شدند. کیفیت اسپرم با اندازه‌گیری درصد اسپرم‌های متحرک، تعداد اسپرم‌های زنده، آکروزوم‌های سالم و همچنین بررسی اسپرماتوزوآهای واکنش داده در تست تورم هیپواسموتیک (HOST) مورد بررسی قرار گرفت. علاوه بر این تعداد کلی اسپرم‌های زنده (colony forming units/ml)، پس از یخ زدایی نمونه‌ها نیز ارزیابی شد. پس از یخ زدایی نمونه‌ها، درصد اسپرم‌های متحرک به طور معنی‌داری (P<0.05) در گروه شاهد بیشتر از گروه T2 و T3 بود و علاوه بر این درصد اسپرم‌های زنده، آکروزوم‌های سالم و همچنین اسپرماتوزوآهای واکنش داده در تستHOST پس از یخ زدایی در گروه شاهد به طور معنی‌داری (P<0.05) بیشتر از همه گروه‌های تیمار بود. در بین گروه‌های تیمار درصد کلی اسپرم‌های زنده، آکروزوم‌های سالم و اسپرماتوزوآهای واکنش داده در تست HOST در گروه T1 به طور معنی‌داری (P<0.05) بیشتر از گروه‌های T2 و T3 بود. تعداد کلی اسپرم‌های زنده پس از یخ زدایی در گروه شاهد به طور معنی‌داری (P<0.05) کمتر از گروه‌های تیمار بود. به عنوان نتیجه‌گیری پایانی، نمی‌توان از عسل به عنوان جایگزین آنتی بیوتیک‌ها برای مراقبت از اسپرم‌ها در برابر بار سنگین میکروبی استفاده کرد، اما شاید بتوان مقادیر بالای 5/2% آن را به عنوان یک منبع انرژی به منی افزود.

کلیدواژه‌ها


Aljady, AM; Kamaruddin, MY; Jamal, AM and Mohd Yassim, MY (2000). Biochemical study on the efficacy of Malaysian honey on inflicted wounds: an animal model. Med. J. Islamic World Acad. Sci., 13: 125-132.
Althouse, GC; Kuster, CE; Clark, SG and Weisiger, RM (2000). Field investigations of bacterial contaminants and their effects on extended porcine semen. Theriogenology. 53: 1167-1176.
Althouse, GC and Lu, KG (2005). Bacteriospermia in extended porcine semen. Theriogenology. 63: 573-584.
Al-Waili, NS (2004). Investigating the antimicrobial activity of natural honey and its effects on the pathogenic bacterial infections of surgical wounds and conjunctiva. J. Med. Food. 7: 210-222.
Aurongzeb, M and Azim, MK (2011). Antimicrobial properties of natural honey: a review of literature. Pak. J. Biochem. Mol. Biol., 44: 118-124.
Banday, MN; Lone, FA; Rasool, F; Rashid, M and Shikari, A (2017). Use of antioxidants reduce lipid peroxidation and improve quality of crossbred ram sperm during its cryopreservation. Cryobiology. 74: 25-30.
Bohlooli, S; Codden, F; Jang, JP; Razzaghzadeh, S and Bozoglu, S (2012). The effect of different extenders on post-thaw sperm viability, motility and membrane integrity in cryopreserved semen of Zandi ram. J. Basic. Appl. Sci. Res., 2: 1120-1123.
Bolarin Guillen, A (2011). Bacteriology in porcine semen. Avances en Tecnología Porcina (España)., 8: 20-30.
Bussalleu, E; Sancho, S; Briz, MD; Yeste, M and Bonet, S (2017). Do antimicrobial peptides PR-39, PMAP-36 and PMAP-37 have any effect on bacterial growth and quality of liquid-stored boar semen? Theriogenology. 89: 235-243.
Bussalleu, E and Torner, E (2013). Quality improvement of boar seminal doses. In: Bonet, S; Casas, I; Holt, WV and Yeste, M (Eds.), Boar reproduction: fundamentals and new biotechnological trends. (1st Edn.), Heidelberg: Springer. PP: 517-550.
Catry, B; Van Duijkeren, E; Pomba, MC; Greko, C; Moreno, MA; Pyorala, S and Torneke, K (2010). Reflection paper on MRSA in food-producing and companion animals, epidemiology and control options for human and animal health. Epidemiol. Infect., 138: 626-644.
El-Nattat, WS; El-Sheshtawy, RI; El-Batawy, KA; Shahba, MI and El-Seadawy, IE (2016). Preservability of buffalo bull semen in tris-citrate extender enriched with bee’s honey. J. Innov. Pharm. Biol. Sci., 3: 180-185.
El-Sheshtawy, RI; El-Badry, DA; Gamal, A; El-Nattat, WS and Almaaty, AMA (2016). Natural honey as a cryoprotectant to improve Arab stallion post-thawing sperm parameters. Asian Pac. J. Reprod., 5: 331-334.
El-Sheshtawy, RI; El-Nattat, WS; Sabra, HA and Ali, AH (2014). Effect of honey solution on semen preservability of local breeds of cattle bulls. World Appl. Sci. J., 32: 2076-2078.
Fakhrildin, MB; Rana, MR and Alsaadi, AR (2014). Honey supplementation to semen-freezing medium improves human sperm parameters post-thawing. J. Family Reprod. Health. 8: 27-31.
Gundogan, M (2009). Short term preservation of ram semen with different extenders. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergis., 15: 429-435.
Hossain, M; Johannisson, A; Wallgren, M; Nagy, S; Siqueira, AP and Rodriguez-Martinez, H (2011). Flow cytometry for the assessment of animal sperm integrity and functionality, state of the art. Asian J. Androl., 13: 406-419.
Islam, R; Ahmed, K and Deka, BC (2006). Effect of holding and washing on the quality of goat semen. Small Rumin. Res., 66: 51-57.
Jerez-Ebensperger, RA; Luno, V; Olaciregui, M; Gonzalez, N; de Blas, I and Gil, L (2015). Effect of pasteurized egg yolk and rosemary honey supplementation on quality of cryopreserved ram semen. Small Rumin. Res., 130: 153-156.
Kuster, CE and Althouse, GC (2016). The impact of bacteriospermia on boar sperm storage and reproductive performance. Theriogenology. 85: 21-26.
Kwakman, PH and Zaat, SA (2012). Antibacterial com-ponents of honey. IUBMB life. 64: 48-55.
Lone, FA; Islam, R; Khan, MZ and Sofi, KA (2012). Effect of different egg yolk-based extenders on the quality of ovine cauda epididymal spermatozoa during storage at 4°C. Reprod. Domest. Anim., 47: 257-262.
Maes, D; Nauwynck, H; Rijsselaere, T; Mateusen, B; Vyt, P; de Kruif, A and Van Soom, A (2008). Diseases in swine transmitted by artificial insemination: an overview. Theriogenology. 70: 1337-1345.
Molan, PC (1992). The antibacterial activity of honey. 2—Variation in the potency of the antibacterial activity. Bee World. 73: 59-76.
Molan, PC and Russell, KM (1988). Non-peroxide anti-bacterial activity in some New Zealand honeys. J. Apic. Res., 27: 62-67.
Morrell, JM and Wallgren, M (2011). Removal of bacteria from boar ejaculates by Single Layer Centrifugation can reduce the use of antibiotics in semen extenders. Anim. Reprod. Sci., 123: 64-69.
Morrell, JM and Wallgren, M (2014). Alternatives to antibiotics in semen extenders, a review. Pathogens. 3: 934-946.
Nayik, GA; Dar, BN and Nanda, V (2015). Physico-chemical, rheological and sugar profile of different unifloral honeys from Kashmir valley of India. Arab. J. Chem., (In press) https://doi.org/10.1016/j.arabjc.2015.08. 017.
NDDB (2012). National Dairy Plan Phase I. Manual on. Semen Production. Project Implementation Plan. Vol. IV C. Project Management Unit. (Located in NDDB) 2012. Available from: http://www.nddb.coop/ndpi/English/ AboutNDPI/Manuals-Guidelines/PDFDocuments/PIP-Vol-IV-C-Manual-on-Semen-Production.pdf.
Olayemi, FO; Adeniji, DA and Oyeyemi, MO (2011). Evaluation of sperm motility and viability in honey-included egg yolk based extenders. Global Vet., 7: 19-21.
Ortega-Ferrusola, C; Gonzsalez-Fernandez, L; Muriel, A; Macias-Garcia, B; Rodriguez-Martinez, H; Tapia, JA and Pena, FJ (2009). Does the microbial flora in the ejaculate affect the freezeability of stallion sperm? Reprod. Domest. Anim., 44: 518-522.
Paulenz, H; Soderquist, L; Perez-Pe, R and Berg, KA (2002). Effect of different extenders and storage temperatures on sperm viability of liquid ram semen. Theriogenology. 57: 823-836.
Rakha, BA; Hussain, I; Akhter, S; Ullah, N; Aandrabi, SM and Ansari, MS (2013). Evaluation of tris-citric acid, skim milk and sodium citrate extenders for liquid storage of Punjab Urial (Ovis vignei punjabiensis) spermatozoa. Reprod. Biol., 13: 238-242.
Schulze, M; Dathe, M; Waberski, D and Muller, K (2016). Liquid storage of boar semen: current and future perspectives on the use of cationic antimicrobial peptides to replace antibiotics in semen extenders. Theriogenology. 85: 39-46.
Shukla, MK (2005). Correlation of microbial load of cryo-preserved semen with quality of neat and cryopreserved murrah buffalo bull semen. Buffalo Bull., 24: 84-87.
Taormina, PJ; Niemira, BA and Beuchat, LR (2001). Inhibitory activity of honey against foodborne pathogens as influenced by the presence of hydrogen peroxide and level of antioxidant power. Int. J. Food Microbiol., 69: 217-225.
Tartibian, B and Maleki, BH (2012). The effects of honey supplementation on seminal plasma cytokines, oxidative stress biomarkers, and antioxidants during 8 weeks of intensive cycling training. J. Androl., 33: 449-461.
Yimer, N; Muhammad, N; Sarsaifi, K; Rosnina, Y; Wahid, H; Khumran, AM and Kaka, A (2015). Effect of honey supplementation into Tris extender on cryopreservation of bull spermatozoa. MJAS. 18: 47-54.
Zoheir, KMA; Harisa, GI; Abo-Salem, OM and Ahmad, SF (2015). Honey bee is a potential antioxidant against cyclophosphamide-induced genotoxicity in albino male mice. Pak. J. Pharm. Sci., 28: 973-981.