ارزیابی اثربخشی آمپرولیوم و تولترازوریل در کنترل کوکسیدیوز طبیعی روده خرگوش

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

این آزمایش با هدف بررسی اثربخشی آمپرولیوم، تولترازوریل و ترکیب آن‌ها در خرگوش‌های به طور طبیعی آلوده شده با گونه‌های ایمریا (63/4 ± 103 × 32 اووسیت به ازای هر گرم (OPG) مدفوع) انجام شد. 36 خرگوش (سن 11 هفته با میانگین وزن بدن (BW) 75 ± 2000 گرم) به طور تصادفی در 6 گروه (6 خرگوش در هر گروه) قرار گرفتند، یا منفی بدون درمان و به عنوان کنترل منفی نگهداری شدند (گروه 1)، آلوده و بدون درمان نگهداری شدند (گروه 2)، درمان شده با تک دوز خوراکی آمپرولیوم در mg/kg BW 50 به مدت 5 روز درمان شدند (گروه 3)، تولترازوریل با دوز mg/kg BW 5 به مدت 2 روز دریافت کردند (گروه 4)، به صورت خوراکی با تولترازوریل با دوز mg/kg BW 5/2، دو دوز با فاصله 5 روز درمان شدند (گروه 5) و دوزهای خوراکی آمپرولیوم و تولترازوریل به ترتیب به میزان mg 50 و mg/kg BW 5 دریافت کردند (گروه 6). علائم بالینی، مرگ و میر، داده‌های مربوط به تولید (مصرف خوراک، ضریب تبدیل خوراک، وزن بدن، افزایش وزن بدن (BWG)، و شاخص عملکرد (PI))، اووسیت‌ها در هر گرم مدفوع و درصد کاهش OPG ثبت شدند. نتایج نشان دادند که هر دو آمپرولیوم و تولترازوریل و استفاده همزمان آن‌ها توانست به طور معنی‌داری OPG را کاهش دهد (P<0.05) و به طور مؤثری مرگ و میر مربوط به کوکسیدیوز را کنترل کند، علائم بالینی را به طور کامل برطرف کرد، مصرف خوراک، وزن بدن، افزایش وزن، و ضریب تبدیل خوراک را بهبود بخشید. از مشاهدات مطالعه حاضر می‌توان چنین نتیجه گرفت که مصرف خوراکی هر دو دارو و استفاده ترکیبی آن‌ها اثرات جانبی کوکسیدیوز روده‌ای در خرگوش را به عنوان درمان بهبود بخشید، اما استفاده همزمان هر دو دارو مؤثرتر بود.

کلیدواژه‌ها


Abakar, AD; Seri, HI; Ismail, AA and Musa, HH (2005). Comparative efficacy of selected anticoccidial drug in Ambarorow sheep naturally infected with enteric coccidia in South Darfur, Sudan. Sudan J. Vet. Res., 20: 61-67.
Al-Quraishy, S (2012). Exogenous and endogenous stages of Eimeria perforans naturally infected domestic rabbit (Oryctolagus cuniculus) in Saudi Arabia: light microscopic study. Saudi J. Biol. Sci., 19: 31-34. doi: 10.1016/j.sjbs. 2011.09.003.
Balicka-Ramisz, A (1999). The usefulness of Baycox (Bayer) for coccidiosis control of lambs. Wiad. Parazytol., 45: 187-191.
Borenstein, M; Rothstein, H and Cohen, J (1997). Sample power: release 1.00. Chicago, IL: SPSS Inc.
Dowling, L (1992). Ionophore toxicity in chickens: a review of pathology and diagnosis. Avian Pathol., 21: 355-368.
Eckert, J; Taylor, M; Catchpole, J; Licois, D; Coudert, P and Bucklar, H (1995). Identification of Eimeria species and strains. Morphological characteristics of oocysts. In: Eckert, J; Braun, R; Shirley, MW and Coudert, P (Eds.), Biotechnology: Guidelines on Techniques in Coccidiosis Research. Office for Official Publications of the European Communities. Luxembourg. PP: 113-116.
González-Redondo, P; Finzi, A; Negretti, P and Micci, M (2008). Incidence of coccidiosis in different rabbit keeping systems. Arq. Bras. Med. Vet. Zootec., 60: 1267-1270.
Graat, EAM; Kooij, E; Frankena, K; Henken, AM; Smeets, JFM and Hekerman, MTJ (1998). Quantifying risk factors of coccidiosis in broilers using on-farm data based on a veterinary practice. Prev. Vet. Med., 33: 297-308.
Grèes, V; Voza, T; Chabaud, A and Landau, I (2003). Coccidiosis of the wild rabbit (Oryctolagus cuniculus) in France. Parasite. 10: 51-57.
Greuel, E and Ruhrmann, U (1986). Effectiveness of various dosage concentrations and administration times of Baycox® medication in experimental chicken coccidiosis in caged conditions. Dtsch. Tierztl. Wochenschr., 93: 29-33.
Grief, G (2000). Immunity to coccidiosis after treatment with toltrazuril. Parasitol. Res., 86: 787-790.
Hauptman, K; Tichy, F and Knotek, Z (2001). Clinical diagnostics of hepatopathies in small mammals: evaluation of importance of individual methods. Acta Vet. Brno., 70: 297-11. doi: 10.2754/avb200170030297.
Iqbal, A; Tariq, KA; Wazir, VS and Singh, R (2013). Antiparasitic efficacy of Artemisia absinthium toltrazuril and amprolium against intestinal coccidiosis in goats. J. Parasit. Dis., 37: 88-93.
Jithendran, KP and Bhat, TK (1996). Subclinical coccidiosis of Angora rabbits, a field survey in Himachal Pradesh, India. World Rabbit Sci., 4: 29-32.
McDougald, LR and Reid, WM (1997). Coccidiosis. In: Calnek, BW (Ed.), Diseases of poultry. (10th Edn.), USA, IowaStateUniversity, Press Ames. PP: 865-883.
Mehlhorn, H; Ortmann-Falkenstein, G and Haberkorn, A (1984). The effects of sym. Triazinones on developmental stages of Eimeria tenella, E. maxima and E. acervulina: a light and electron microscopical study. Z. Parasitenkd., 70: 173-182.
Morand-Fehr, P; Richard, A; Tessier, J and Hervieu, J (2002). Effects of decoquinate on the growth and milk performance of young female goats. Small Rumin. Res., 45: 109-114.
Moskey, HE and Harwood, PD (1941). Methods of evaluating the efficacy of antihelmintics. Am. J. Vet. Res., 2: 55-59.
Mukiibi-Muka, G; Otim, MO; Musisi, G; Illango, J; Galiwango, T and Olaho-Mukani, W (2001). Com-parative study on the efficacy of Diclazuril and Amprolium in naturally infected broilers in Uganda. Rev. Elev. Med. Vet. Pays Trop., 54: 33-35.
Mundt, HC; Daugschies, A; Uebe, F and Rinke, M (2003). Efficacy of toltrazuril against artificial infections with Eimeria bovis in calves. Parasitol. Res., 3: S166-S167. doi: 10.1007/s00436-003-0929-z.
North, MO (1984). Commercial chicken production manual. 3rd Edn., California, USA, AVI Publishing Company. P: 710.
Oncel, T; Gulegen, E; Senlik, B and Bakirci, S (2011). Intestinal coccidiosis in angora rabbits (Oryctolagus cuniculus) caused by Eimeria intestinalis, Eimeria perforans and Eimeria coecicola. YYU Veteriner. Fakultesi. Dergisi., 22: 27-29.
Paklandl, M (2009). Coccidia of rabbit: a review. Folia Parasitol., 56: 153-166.
Peek, HW and Landman, WJM (2003). Resistance to anticoccidial drugs of Dutch avian Eimeria spp. field isolates originating from 1996, 1999 and 2001. Avian Pathol., 32: 391-401.
Peeters, JE and Geeroms, R (1986). Efficacy of toltrazuril against intestinal and hepatic coccidiosis in rabbits. Vet. Parasitol., 22: 21-35.
Pritchard, MH and Kruse, GO (1982). The collection and preservation of animal parasites. Technical Bulletin No. 1. The Harold W. Manter Laboratory, University of Nebraska Press. PP: 120-141.
Redrobe, SP; Gakos, G; Elliot, SC; Saunders, R; Martin, S and Morgan, ER (2010). Comparison of toltrazuril and sulphadimethoxine in the treatment of intestinal coccidiosis in pet rabbits. Vet. Rec., 167: 287-290. doi: 10.1136/vr. c3453.
Shameem, H; Devada, K and Mammen, AJ (2011). Clinico-pathological effects of intestinal coccidiosis in rabbits. Indian J. Vet. Pathol., 35: 215-216.
Singla, LD; Juyal, PD and Sandhu, BS (2000). Pathology and therapy in naturally Eimeria stiedae infected rabbits. J. Protozool. Res., 10: 185-191.
Svensson, C (1998). Prevention of Eimeria alabamensis
coccidiosis by along-acting baquiloprim/sulphadimidine bolus. Vet. Parasitol., 74: 143-152.
Taylor, MA; Coop, RL and Wall, RL (2007). Veterinary parasitology. 3rd Edn., Oxford, UK, Blackwell Publishing. PP: 1385-1398.
Zulpo, DL; Peretti, J; Ono, LM; Longhi, E; Oliveira, MR; Guimaraes, IG; Headley, SA; Junior, J and Garcia, JL (2007). Pathogenicity and histopathological, observations of commercial broiler chicks experimentally infected with isolates of Eimeria tenella, E. acervulina and E. maxima. Semin: Ciênc. Agrár., 28: 97-104.