الگوهای حساسیت آنتی بیوتیکی در تحت گونه‌های استافیلوکوکوس‌های جدا شده از شیر بز به همراه تشخیص مولکولی ژن‌های مقاومت به آنتی بیوتیک

نوع مقاله : مقاله کوتاه

نویسندگان

چکیده

پیشینه: میکروب‌ها به داروهایی که برای درمان عفونت‌ها استفاده می‌شوند به دلیل توانایی ایجاد مقاومت ضد میکروبی، بی‌پاسخ می‌شوند. هدف: کار تحقیقاتی حاضر به منظور مطالعه الگوهای فنوتیپی و ژنوتیپی مقاومت ضد میکروبی در تحت گونه‌های استافیلوکوکوس جدا شده از شیر بز انجام شد. روش کار: در مجموع 200 نمونه شیر از بزهای سالم و مبتلا به ورم پستان در استان پنجاب، هند بررسی شد. سپس جدایه‌ها به طور بیوشیمیایی و مولکولی (واکنش زنجیره‌ای پلیمراز (PCR)) شناسایی شدند. آزمایش حساسیت آنتی بیوتیکی با استفاده از 15 آنتی بیوتیک مختلف انجام شد. تشخیص مولکولی ژن‌های مقاومت به آنتی بیوتیک با استفاده از PCR انجام شد. به منظور مطالعه ارتباط بین الگوهای مقاومت ژنوتیپی و فنوتیپی در بین جدایه‌ها، آزمون مربع کای انجام شد. نتایج: در مجموع 47 تحت گونه استافیلوکوکوس جداسازی شدند که به ترتیب 33 و 14 جدایه کواگولاز مثبت و منفی بودند. جدایه‌ها بیشترین مقاومت فنوتیپی را به پنی‌سیلین جی (P) (4/91%) نشان دادند. استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به متی‌سیلین (MRSA) 25/56% بودند. در بین ژن‌های مقاومت به آنتی بیوتیک، tetK (23/87%) شایع‌ترین ژن‌ جدا شده بود و پس از آن، blaZ (10/85%)، mecA (93/48%) و tetM (89/14%) بودند. تحلیل آماری نشان داد که الگوهای مقاومت فنوتیپی و ژنوتیپی با مقاومت‌ به پنی سیلین و متی سیلین (MET) به طور معنی‌داری با هم در ارتباط هستند. نتیجه‌گیری: شیوع بالای تحت گونه‌های استافیلوکوکوس مقاوم به آنتی بیوتیک، بخصوص MRSA، در شیر بز نگران کننده است و باید در این منطقه مورد توجه قرار گیرد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Arora, S; Agarwal, RK and Bist, B (2006). Comparison of ELISA and PCR vis-à-vis cultural methods for detecting Aeromonas spp. in foods of animal origin. Int. J. Food Microbiol., 106: 177-183.
Bergonier, D; De Crémoux, R; Rupp, R; Lagriffoul, G and Berthelot, X (2003). Mastitis of dairy small ruminants. Vet. Res., 34: 689-716.
Brown, DFJ and Reynolds, PE (1980). Intrinsic resistance to beta-lactam antibiotics in S. aureus. FEBS Lett., 122: 275-278.
Choi, SM; Kim, SH; Kim, HJ; Lee, DG; Choi, JH; Yoo, JH; Kang, JH; Shin, WS and Kang, MW (2003). Multiplex PCR for the detection of genes encoding aminoglycoside modifying enzymes and methicillin resistance among Staphylococcus species. J. Korean Med. Sci., 18: 631-636.
Emaneini, M; Bigverdi, R; Kalantar, D; Soroush, S; Jabalameli, F; Noorazar, KB; Asadollahi, P and Taherikalani, M (2013). Distribution of genes encoding tetracycline resistance and aminoglycoside modifying enzymes in S. aureus strains isolated from a burn center. Ann. Burns Fire Disasters. 26: 76-80.
Franca, CA; Peixoto, RM; Cavalcante, MB; Melo, NF; Oliveira, CJB; Veschi, JLA; Mota, RA and Costa, MM (2012). Antimicrobial resistance of Staphylococcus spp. from small ruminant mastitis in Brazil. Pesq. Vet. Bras., 32: 747-753.
Georgopapadakou, NH (1993). Penicillin-binding proteins and bacterial resistance to β lactams. Antimicrob. Agents Chemother., 37: 2045-2053.
Gundogan, N; Citak, S and Turan, E (2006). Slime production, DNAse activity and antibiotic resistance of Staphylococcus aureus isolated from raw milk, pasteurized milk and ice cream samples. Food Control. 17: 389-392.
Huys, G; D’Haene, K; Van Eldere, J; Von Holy, A and Swings, J (2005). Molecular diversity and characterization of tetracyclin-resistant S. aureus isolates from a poultry processing plant. Appl. Environ. Microbiol., 71: 574-579.
Kour, G; Chandra, M; Kaur, G; Narang, D; Gupta, DK; Arora, AK and Sharma, NS (2017). Prevalence of
mastitis causing organism and their antibiotic resistance pattern in dairy farms. Indian J. Dairy Sci., 70: 587-592.
Martineau, F; Picard, JF; Lansac, N; Menard, C; Roy, HP; Ouellette, M and Bergeron, MG (2000). Correlation between the resistance genotype determined by multiplex PCR assays and the antibiotic susceptibility patterns of S. aureus and S. epidermidis. Antimicrob. Agents Chemother., 44: 231-238.
Moroni, P; Vellere, F; Antonini, M; Pisoni, G; Ruffo, G and Carli, S (2004). Antibiotic susceptibility of coagulase-negative staphylococci isolated from goats’ milk. Int. J. Antimicrob. Agents., 23: 637-640.
Poutrel, B; De Cremoux, R; Ducelliez, M and Verneau, D (1997). Control of intramammary infections in goats: impact on somatic cell counts. Anim. Sci. J., 75: 566-570.
Rahmdel, S; Hosseinzadeh, S; Shekarforoush, SS; Torriani, S; Gatto, V and Pashangeh, S (2018). Safety hazards in bacteriocinogenic Staphylococcus strains isolated from goat and sheep milk. Microb. Pathog., 116: 100-108.
Rola, JG; Sosnowski, M; Ostrowska, M and Osek, J (2015). Prevalence and antimicrobial resistance of coagulase-positive staphylococci isolated from raw goat milk. Small Rumin. Res., 123: 124-128.
Ruiz, P; Barragán, I; Seseña, S and Palop, ML (2016). Is staphylococci population from milk of healthy goats safe? Int. J. Food Microbiol., 238: 146-152.
Sabath, LD (1979). Staphylococcal tolerance to penicillins and cephalosporins. ASM., PP: 299-303.
Sabath, LD (1982). Mechanisms of resistance to β-lactam antibiotics in strains of S. aureus. Ann. Intern. Med., 97: 339-344.
Santis, EPL; Mencarelli, A and Nieddu, MP (2001). Efficacy of endomammarian administration of cloxacillin benzatine for the treatment of intramammary infections in the dry ewes. Large Anim. Rev., 7: 39-47.
Sarangi, LN; Panda, HK; Priyadarshini, A; Palai, T; Ranabijuli, S; Sahoo, S; Dash, AK; Mohanty, N; Kar, BC and Mohanty, DN (2009). Antibiogram and drug resistance of Staphylococcus aureus isolated from bovine clinical and subclinical mastitis. J. Res., 27: 136-138.
Sree, PD and Ayodha, S (2016). Bacteriological and antibiogram studies of milk samples of clinical mastitis in goats. IOSR-JAVS., 9: 33-35.
Strommenger, B; Kettlitz, C; Werner, G and Witte, W (2003). Multiplex PCR assay for simultaneous detection of nine clinically relevant antibiotic resistance genes in S. aureus. J. Clin. Microbiol., 41: 4089-4094.
Ünal, N; Askar, S; Macun, HC; Sakarya, F; Altun, B and Yıldırım, M (2012). Panton-Valentine leukocidin and some exotoxins of Staphylococcus aureus and antimicrobial susceptibility profiles of staphylococci isolated from milks of small ruminants. Trop. Anim. Health Prod., 44: 573-579.
Virdis, S; Scarano, C; Cossu, F; Spanu, V; Spanu, C and De Santis, EPL (2010). Antibiotic resistance in Staphylococcus aureus and coagulase negative staphylococci isolated from goats with subclinical mastitis. Vet. Med. Int., 2010: 517060. doi: 10.4061/2010/517060.
Walther, B; Friedrich, AW; Brunnberg, L; Wieler, LH and Becker, LA (2006). Methicillin resistant S. aureus (MRSA) in veterinary medicine: a new emerging pathogen? Berl. Munch. Tierarztl. Wochenschr., 119: 222-232.
WHO (2001). Global strategy for containment of antimicrobial resistance. http://www.who.int/csr/resources/publications/ drugresist/WHO_CDS_CSR_DRS_2001_2_EN/en/.