عفونت کلبسیلا نومونیا در قناری‌ها: گزارش موردی

نوع مقاله : گزارش علمی

نویسندگان

چکیده

پیشینه: کلبسیلا نومونیا می‌تواند منجر به تلفات بالا در پرندگان ‌شود. در سال‌های اخیر، پرورش قناری در ایران گسترش یافته است و بیماری‌های عفونی، مانع اصلی پیشرفت چنین مشاغلی هستند و این موضوع اهمیت شناسایی عوامل باکتریایی بیماری‌زا را افزایش می‌دهد. توصیف بیمار: گله‌ای شامل 250 قناری یک ساله با تاریخچه بی‌حالی، بی‌اشتهایی، اسهال خفیف و تلفات تقریبی 30 درصد ارجاع داده شد. در معاینه بالینی، پرندگان شدیدا ضعیف، لاغر، دهیدره با پرهای ژولیده بودند و مدفوع تغییر رنگ یافته در اطراف کلواک مشاهده شد. نتایج کالبدگشایی نشان دهنده کبد بزرگ و دارای کانون‌های سفید و نامنظم کم‌رنگ متعدد در سطح پارانشیم، خونریزی‌‌های پتشی سروزی روی کبد، کلیه‌ها و ریه‌ها بود. روده‌ها شدیدا پرخون و دارای اگزودای فیبرینونکروتیک بودند. یافته‌های هیستوپاتولوژی کبد نشان دهنده نکروز هپاتوسلولار چندکانونی، کلونی‌های خونریزی و باکتریایی بازوفیلیک بود. نتایج آزمون‌های بیوشیمیایی و مولکولی تایید کننده کلبسیلا نومونیا به عنوان عامل ایجاد کننده بیماری بود. یافته‌ها/درمان و نتیجه درمان: بر اساس آزمون حساسیت آنتی بیوتیکی، جدایه‌های کلبسیلا نومونیا نسبت به جنتامایسین و سیپروفلوکساسین حساس بودند که این داروها به عنوان پروتوکل درمانی در نظر گرفته شدند. نتیجه‌گیری: کلبسیلا نومونیا با مقاومت آنتی بیوتیکی چندگانه یکی از مهمترین عوامل مرگ و میر در قناری‌ها است، بنابراین ارزیابی‌های وضعیت سلامتی می‌تواند اطلاعات مناسبی را در جهت تصمیم گیری در رابطه با پروتوکل‌های بهداشتی، کنترل، پیشگیری و درمان فراهم کند.

کلیدواژه‌ها


Atherton, JG (1975). The identification of equine genital strains of Klebsiella and Enterobacter species. Equine Vet. J., 7: 207-209.
Braman, SK; Eberhart, RJ; Asbury, MA and Hermann, GJ (1973). Capsular types of Klebsiella pneumoniae associated with bovine mastitis. J. Am. Vet. Med. Assoc., 162: 109-111.
Brisse, S and Van Duijkeren, E (2005). Identification and antimicrobial susceptibility of 100 Klebsiella animal clinical isolates. Vet. Microbiol., 105: 307-312.
Chander, Y; Ramakrishnan, MA; Jindal, N; Hanson, K and Goyal, SM (2011). Differentiation of Klebsiella pneumoniae and Klebsiella oxytoca by multiplex polymerase chain reaction. Int. J. Appl. Res. Vet. Med., 9: 138-142.
Chanos, P and Mygind, T (2016). Co-culture-inducible bacteriocin production in lactic acid bacteria. Appl. Microbiol. Biotechnol., 100: 4297-4308.
CLSI (2019). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. 29th Edn., CLSI Supplement M100. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute.
Davies, YM; Cunha, MPV; Oliveira, MGX; Oliveira, MCV; Philadelpho, N; Romero, DC; Milanelo, L; Guimarães, MB; Ferreira, AJP; Moreno, AM; Sá, LRM and Knöbl, T (2016). Virulence and antimicrobial resistance of Klebsiella pneumoniae isolated from passerine and psittacine birds. Avian Pathol., 45: 194-201.
El Fertas-Aissani, R; Messai, Y; Alouache, S and Bakour, R (2013). Virulence profiles and antibiotic susceptibility patterns of Klebsiella pneumoniae strains isolated from different clinical specimens. Pathologie Biologie. 61: 209-216.
Fecteau, G; Van Metre, DC; Pare, J; Smith, BP; Higgins, R; Holmberg, CA; Jang, S and Guterbock, W (1997). Bacteriological culture of blood from critically ill neonatal calves. Can. Vet. J., 38: 95-100.
Gerlach, H (1994). Bacteria. In: Ritchie, BW; Harrison, GJ and Harrison, LR (Eds.), Avian medicine: principles and application. (1st Edn.), Florida: Wingers Publishing. PP: 949-983.
Giacopello, C; Foti, M; Fisichella, V and Piccolo, FL (2015). Antibiotic-resistance patterns of Gram-negative bacterial isolates from breeder canaries (Serinus canaria domestica) with clinical disease. J. Exot. Pet. Med., 24: 84-91.
Gibbs, PS; Kasa, R; Newbrey, JL; Petermann, SR; Wooley, RE; Vinson, HM and Reed, W (2007). Identification, antimicrobial resistance profiles, and virulence of members from the family Enterobacteriaceae from the feces of yellow-headed blackbirds (Xanthocephalus xanthoce-phalus) in North Dakota. Avian Dis., 51: 649-655.
Glünder, G (2002). Influence of diet on the occurrence of some bacteria in the intestinal flora of wild and pet birds. Dtsch. Tierarztl. Wochenschr., 109: 266-270.
Lee, LH and Lee, KH (1997). Application of the polymerase chain reaction for the diagnosis of fowl poxvirus infection. J. Virol. Methods. 63: 113-119.
Podschun, R and Ullmann, U (1998). Klebsiella spp. as nosocomial pathogens: epidemiology, taxonomy, typing methods, and pathogenicity factors. Clin. Microbiol. Rev., 11: 589-603.
Razmyar, J and Zamani, AH (2016). An outbreak of yolk sac infection and dead-in-shell mortality in common canary (Serinus canaria) caused by Klebsiella pneumoniae. Iran. J. Vet. Res., 17: 141-143.
Ripabelli, G; Tamburro, M; Guerrizio, G; Fanelli, I; Flocco, R; Scutellà, M and Sammarco, ML (2018). Tracking multidrug-resistant Klebsiella pneumoniae from an Italian hospital: molecular epidemiology and surveillance by PFGE, RAPD and PCR-based resistance genes prevalence. Curr. Microbiol., 75: 977-987.
Roberts, DE; McClain, HM; Hansen, DS; Currin, P and Howerth, EW (2000). An outbreak of Klebsiella pneumoniae infection in dogs with severe enteritis and septicemia. J. Vet. Diagn. Invest., 12: 168-173.
Saidenberg, AB; Teixeira, RHF; Guedes, NMR; Allgayer, MDC; Melville, PA and Benites, NR (2012). Molecular detection of enteropathogenic Escherichia coli in asymptomatic captive psittacines. Pesqui. Vet., 32: 922-926.
Shokrpoor, S; Baghkheirati, AA; Yazdani, A and Razmyar, J (2019). Cutaneous xanthogranuloma associated with Klebsiella pneumoniea in a budgerigar (Melopsittacus undulatus). Vet. Res. Forum. 10: 365-367.
Vuotto, C; Longo, F; Balice, MP; Donelli, G and Varaldo, PE (2014). Antibiotic resistance related to biofilm formation in Klebsiella pneumoniae. Pathogens. 3: 743-758.
Yang, F; Deng, B; Liao, W; Wang, P; Chen, P and Wei, J (2019). High rate of multi-resistant Klebsiella pneumoniae from human and animal origin. Infect. Drug Resist., 12: 2729-2737.