ردیابی مولکولی آدنوویروس پرندگان تیپ 7 از جوجه‌های گوشتی کشتار شده در ایران: اولین گزارش

نوع مقاله : مقاله کوتاه

نویسندگان

چکیده

پیشینه: آدنوویروس‌های پرندگان (FAdVs) مسئول انواع مختلف علائم بالینی با اهمیت روز افزون در صنعت طیور در سرتاسر جهان می‌باشد. بیماری‌های معمول ناشی از FAdVs شامل هپاتیت به همراه گنجیدگی (IBH)، سندرم آب‌آوردگی پریکارد-هپاتیت (HHS)، فرسایش سنگدان (GE)، بیماری تنفسی و خونریزی در ماهیچه و سایر ارگان‌ها می‌باشد. هدف: طی سال 1399، جوجه‌های گوشتی از شمال ایران خونریزی‌های پتشی و اکیموز را در ماهیچه‌های ران و سینه در کشتارگاه‌ نشان دادند. خونریزی‌ها در 10 تا 60% (با میانگین 20 تا 30%) جوجه‌ها در هر گله مشاهده شد برای آگاهی از علت این ضایعات، مطالعه حاضر انجام شد. روش کار: فاکتورهای مختلف محیطی مورد بررسی قرار گرفت و FAdV، ویروس بیماری بورس عفونی (IBDV) و ویروس کم‌خونی عفونی جوجه‌ها (CIAV) با استفاده از سنجش‌های مولکولی تشخیص داده شد. نتایج: در بین ویروس‌های مورد آزمایش، FAdV توسط واکنش زنجیره‌ای پلیمراز (PCR) تشخیص داده شد و تجزیه و تحلیل توالی ویروس را در گونه‌های E، سروتیپ 7 قرار داد. نتیجه‌گیری: این اولین گزارش از وجود FAdV-7 در طیور ایران می‌باشد. غربالگری موثر جوجه‌ها در سن کشتار باید در کل کشور انجام شود.
 

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Chen, L; Yin, L; Zhou, Q; Peng, P; Du, Y; Liu, L; Zhang, Y; Xue, C and Cao, Y (2019). Epidemiological investigation of fowl adenovirus infections in poultry in China during 2015-2018. BMC Vet. Res., 15: 271.
Erny, K; Barr, D and Fahey, K (1991). Molecular characterization of highly virulent fowl adenoviruses associated with outbreaks of inclusion body hepatitis. Avian Pathol., 20: 597-606.
Hiremath, C; Jhala, M; Bhanderi, B and Joshi, CG (2013). Cloning and sequence analysis of VP1, VP2 and VP3 genes of Indian chicken anemia virus. Iran. J. Vet. Res., 14: 354-357.
Hosseini, H; Langeroudi, AG; FallahMehrabadi, MH; Kafi, ZZ; Dizaji, RE; Ghafouri, SA; Hamadan, AM; Aghaiyan, L and Hajizamani, N (2019). The fowl adenovirus (Fadv-11) outbreak in Iranian broiler chicken farms: The first full genome characterization and phylogenetic analysis. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis., 70: 101365.
Hosseini, H and Morshed, R (2012). Molecular identification of fowl adenovirus associated with inclusion body hepatitis in Iran. Iran. J. Virol., 6: 7-12.
Kaján, GL; Affranio, I; Bistyák, AT; Kecskeméti, S and Benkő, M (2019). An emerging new fowl adenovirus genotype. Heliyon. 5: e01732.
Kaján, GL; Kecskeméti, S; Harrach, B and Benkő, M (2013). Molecular typing of fowl adenoviruses, isolated in Hungary recently, reveals high diversity. Vet. Microbiol., 167: 357-363.
Kefford, B; Borland, R; Slattery, J and Grix, D (1980). Serological identification of avian adenoviruses isolated from cases of inclusion body hepatitis in Victoria, Australia. Avian Dis., 24: 998-1006.
Khodakaram-Tafti, A; Asasi, K and Namazi, F (2016). Clinicopathological characteristics of acute inclusion body
hepatitis outbreak in broiler chickens in Iran. Bulg. J. Vet. Med., 19: 163-168.
Mittal, D; Jindal, N; Tiwari, AK and Khokhar, RS (2014). Characterization of fowl adenoviruses associated with hydropericardium syndrome and inclusion body hepatitis in broiler chickens. Virus Dis., 25: 114-119.
Morshed, R; Hosseini, H; Langeroudi, AG; Fard, MHB and Charkhkar, S (2017). Fowl adenoviruses D and E cause inclusion body hepatitis outbreaks in broiler and broiler breeder pullet flocks. Avian Dis., 61: 205-210.
Nateghi, E; Razmyar, J and Bassami, MR (2014). Molecular characterization of avian adenoviruses in Iranian broiler flocks. Iran. J. Vet. Res., 15: 164-167.
Rahimi, M and Haghighi, ZMS (2015). Adenovirus-like inclusion body hepatitis in a flock of broiler chickens in Kermanshah province, Iran. Vet. Res. Forum., 6: 95-98.
Razmyar, J and Peighambari, SM (2009). Isolation and characterization of a very virulent infectious bursal disease virus from turkey. Acta Virol., 53: 271-276.
Ren, G; Wang, H; Huang, M; Yan, Y; Liu, F and Chen, R (2019). Transcriptome analysis of fowl adenovirus serotype 4 infection in chickens. Virus Genes., 55: 619-629.
Sapats, SI and Ignjatovic, J (2002). Restriction fragment length polymorphism analysis of the VP2 gene of Australian strains of infectious bursal disease virus. Avian Pathol., 31: 559-566.
Singh, A; Oberoi, M; Grewal, G; Hafez, H and Hess, M (2002). The use of PCR combined with restriction enzyme analysis to characterize fowl adenovirus field isolates from northern India. Vet. Res. Commun., 26: 577-585.
Steer, PA; Kirkpatrick, NC; O’Rourke, D and Noormohammadi, AH (2009). Classification of fowl adenovirus serotypes by use of high-resolution melting-curve analysis of the hexon gene region. J. Clin. Microbiol., 47: 311-321.
Tabib Ghafari, P; Boroomand, Z; Rezaie, A; Mayahi, M and Eftekharian, S (2018). Detection and identification of avian adenovirus in broiler chickens suspected of inclusion body hepatitis in Khuzestan, Iran during 2015-2016. Iran. J. Vet. Res., 9: 41-45.