تاثیر ویروس اسهال ویروسی گاو بر فنوتیپ مونوسیت گاوی

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسنده

چکیده

ویروس اسهال ویروسی گاو (BVDV) از لحاظ اقتصادی یک پاتوژن مهم صنعت پرورش دام در سراسر دنیا است. BVDV بسته به اثرات آن بر سلول‌های کشت شده به سیتوپاتیک (cp) و غیر سیتوپاتیک (ncp) دسته‌بندی می‌شود. BVDV شناخته شده است که پاسخ ایمنی میزبان را تغییر می‌دهد. از این، مولکول‌های کمپلکس سازگاری بافتی اصلی (MHC) کلاس II نقش محوری در توسعه و عملکرد سیستم ایمنی بازی می‌کند، و در گاو شامل دو نوع DR و DQ هستند. در این مطالعه، ما بیان MHC کلاس II بر روی مونوسیت‌های آلوده شده با          ncp BVDV1 یا ncp BVDV2 را ارزیابی کردیم. با استفاده از فلوسایتومتری (P<0.01)، مقدار سطح mRNA (real time RT-PCR کمی، P<0.01) و وسترن بلات (P<0.001)، ما متوجه شدیم که بیان‌های MHC DQ کلاس II به طور معنی‌داری در مونوسیت‌های آلوده به ncp BVDV2 در مقایسه با بیان آن در سلول‌های آلوده با ncp BVDV1 کاهش یافت. علاوه بر این، تولید اینترفرون گاما (IFNγ) به طور قابل توجهی در مونوسیت‌های آلوده به ncp BVDV2 (P<0.001) در مقایسه با آن‌های آلوده به ncp BVDV1 کاهش یافت. این یافته‌ها پیشنهاد می‌کنند که ncp BVDV2 سبب کاهش بیان DQ MHC کلاس II و کاهش تولید IFNγ می‌شود، که منجر به فرار از شناسایی ایمنی و سرکوب مکانیسم دفاعی آنتی ویروسی پاسخ ایمنی ذاتی می‌شود. در نتیجه، نتایج اثبات می‌کنند که ncp BVDV1 و ncp BVDV2 به طور متفاوتی به پاسخ ایمنی ذاتی میزبان واکنش می‌دهند. بنابراین، داده‌های ما دیدی نسبت به مکانیسمی ارائه می‌کنند که بر خلاف        ncp BVDV1، ncp BVDV2 بروز آنتی ژن را مختل کرده، کنترل عفونت ویروسی را با شکست مواجه کرده، و باعث ایجاد بیماری شدیدتری می‌شود.

کلیدواژه‌ها

مراجع

Andersson, L; Lundén, A; Sigurdardottir, S; Davies, CJ and Rask, L (1988). Linkage relationships in the bovine MHC region. High recombination frequency between class II subregions. Immunogenetics. 27: 273-280.
Archambault, D; Beliveau, C; Couture, Y and Carman, S (2000). Clinical response and immunomodulation follow-ing experimental challenge of calves with type 2 noncyto-pathogenic bovine viral diarrhea virus. Vet. Res., 31: 215-227.
Baker, JC (1995). The clinical manifestations of bovine viral diarrhea infection. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract., 11: 425-445.
Brackenbury, LS; Carr, BV and Charleston, B (2003). Aspects of the innate and adaptive immune responses to acute infections with BVDV. Vet. Microbiol., 96: 337-344.
Chase, CC (2013). The impact of BVDV infection on adaptive immunity. Biologicals. 41: 52-60.
Chase, CC; Elmowalid, G and Yousif, AA (2004). The immune response to bovine viral diarrhea virus: a constant-ly changing picture. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract., 20: 95-114.
Glew, EJ; Carr, BV; Brackenbury, LS; Hope, JC; Charleston, B and Howard, CJ (2003). Differential effects of bovine viral diarrhoea virus on monocytes and dendritic cells. J. Gen. Virol., 84: 1771-1780.
Glew, EJ and Howard, CJ (2001). Antigen-presenting cells from calves persistently infected with bovine viral diarrhoea virus, a member of the Flaviviridae, are not compromised in their ability to present viral antigen. J. Gen. Virol., 82: 1677-1685.
Kumar, H; Kawai, T and Akira, S (2011). Pathogen recogni-tion by the innate immune system. Int. Rev. Immunol., 30: 16-34.
La Gruta, NL and Turner, SJ (2014). T cell mediated immunity to influenza: mechanisms of viral control. Trends Immunol., 35: 396-402.
Lee, SR; Nanduri, B; Pharr, GT; Stokes, JV and Pinchuk, LM (2009). Bovine viral diarrhea virus infection affects the expression of proteins related to professional antigen presentation in bovine monocytes. Biochim. Biophys. Acta. 1794: 14-22.
Lewin, HA; Russell, GC and Glass, EJ (1999). Comparative organization and function of the major histocompatibility complex of domesticated cattle. Immunol. Rev., 167: 145-158.
Peterhans, E; Jungi, TW and Schweizer, M (2003). BVDV and innate immunity. Biologicals. 31: 107-112.
Ridpath, JF; Bendfeldt, S; Neill, JD and Liebler-Tenorio, E (2006) Lymphocytopathogenic activity in vitro correlates with high virulence in vivo for BVDV type 2 strains: criteria for a third biotype of BVDV. Virus Res., 118: 62-69.
Rupp, R; Hernandez, A and Mallard, BA (2007). Associa-tion of bovine leukocyte antigen (BoLA) DRB3.2 with immune response, mastitis, and production and type traits in Canadian Holsteins. J. Dairy Sci., 90: 1029-1038.
Seong, G; Lee, JS; Lee, KH; Shin, SU; Yoon, JY and Choi, KS (2016). Noncytopathic bovine viral diarrhea virus 2 impairs virus control in a mouse model. Arch. Virol., 161: 395-403.
Seong, G; Oem, JK and Choi, KS (2013). Pathogenetic differences after experimental infection of calves with Korean non-cytopathic BVDV-1 and BVDV-2 isolates. Vet. Immunol. Immunopathol., 156: 147-152.
Takeshima, S; Miki, A; Kado, M and Aida, Y (2007). Establishment of a sequence-based typing system for BoLA-DQA1 exon 2. Tissue Antigens. 69: 1891-1899.
Tortorella, D; Gewurz, BE; Furman, MH; Schust, DJ and Ploegh, HL (2000). Viral subversion of the immune system. Annu. Rev. Immunol., 18: 861-926.
Zanotti, M; Poli, G; Ponti, W; Polli, M; Rocchi, M; Bolzani, E; Longeri, M; Russo, S; Lewin, HA and van Eijk, MJ (1996). Association of BoLA class II haplotypes with subclinical progression of bovine leukaemia virus infection in Holstein-Friesian cattle. Anim. Genet., 27: 337-341.

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار