<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE ArticleSet PUBLIC "-//NLM//DTD PubMed 2.7//EN" "https://dtd.nlm.nih.gov/ncbi/pubmed/in/PubMed.dtd">
<ArticleSet>
<Article>
<Journal>
				<PublisherName>Shiraz University</PublisherName>
				<JournalTitle>Iranian Journal of Veterinary Research</JournalTitle>
				<Issn>1728-1997</Issn>
				<Volume>23</Volume>
				<Issue>4</Issue>
				<PubDate PubStatus="epublish">
					<Year>2022</Year>
					<Month>12</Month>
					<Day>01</Day>
				</PubDate>
			</Journal>
<ArticleTitle>Decellularized xenogenic bone graft for repair of segmental bone defect in rabbits</ArticleTitle>
<VernacularTitle>پیوند استخوان زنوژنیک (بیگانه زا) بدون سلول برای ترمیم نقص استخوانی سگمنتال در خرگوش</VernacularTitle>
			<FirstPage>310</FirstPage>
			<LastPage>321</LastPage>
			<ELocationID EIdType="pii">6897</ELocationID>
			
<ELocationID EIdType="doi">10.22099/ijvr.2022.40785.5906</ELocationID>
			
			<Language>EN</Language>
<AuthorList>
<Author>
					<FirstName>P.</FirstName>
					<LastName>Tamilmahan</LastName>
<Affiliation>Ph.D. Student in Veterinary Surgery and Radiology, Division of Veterinary Surgery, Indian Veterinary Research Institute, Izatnagar, Bareilly, Uttar Pradesh, IndiaAssistant Professor, TANUVAS</Affiliation>
<Identifier Source="ORCID">0000-0002-7404-9603</Identifier>

</Author>
<Author>
					<FirstName>R.</FirstName>
					<LastName>Pathak</LastName>
<Affiliation>Division of Veterinary Surgery, Indian Veterinary Research Institute, Izatnagar, Bareilly, Uttar Pradesh, India</Affiliation>

</Author>
<Author>
					<FirstName>Rashmi</FirstName>
					<LastName>Rashmi</LastName>
<Affiliation>Ph.D. Student in Veterinary Surgery and Radiology, Division of Veterinary Surgery, Indian Veterinary Research Institute, Izatnagar, Bareilly, Uttar Pradesh, India</Affiliation>

</Author>
<Author>
					<FirstName>Amarpal</FirstName>
					<LastName>Amarpal</LastName>
<Affiliation>Division of Veterinary Surgery, Indian Veterinary Research Institute, Izatnagar, Bareilly, Uttar Pradesh, India</Affiliation>

</Author>
<Author>
					<FirstName>H. P.</FirstName>
					<LastName>Aithal</LastName>
<Affiliation>Division of Veterinary Surgery, Indian Veterinary Research Institute, Izatnagar, Bareilly, Uttar Pradesh, India</Affiliation>

</Author>
<Author>
					<FirstName>A.</FirstName>
					<LastName>Mohsina</LastName>
<Affiliation>Ph.D. Student in Veterinary Surgery and Radiology, Division of Veterinary Surgery, Indian Veterinary Research Institute, Izatnagar, Bareilly, Uttar Pradesh, India</Affiliation>

</Author>
<Author>
					<FirstName>A. K.</FirstName>
					<LastName>Tiwari</LastName>
<Affiliation>Division of Biological Standardization, Indian Veterinary Research Institute, Izatnagar, Bareilly, Uttar Pradesh, India</Affiliation>

</Author>
<Author>
					<FirstName>K.</FirstName>
					<LastName>Karthik</LastName>
<Affiliation>Department of Veterinary Microbiology, TANUVAS, Tamil Nadu, India</Affiliation>

</Author>
</AuthorList>
				<PublicationType>Journal Article</PublicationType>
			<History>
				<PubDate PubStatus="received">
					<Year>2021</Year>
					<Month>05</Month>
					<Day>25</Day>
				</PubDate>
			</History>
		<Abstract>&lt;strong&gt;Background:&lt;/strong&gt; Bone grafting is a preferred treatment option for the healing of large diaphyseal bone defects and is useful in the management of nonunion, delayed union, and tumor resection. &lt;strong&gt;Aims:&lt;/strong&gt; To investigate a decellularization protocol of bovine cancellous bone for xenogenic implantation in radial bone defects in rabbits. &lt;strong&gt;Methods:&lt;/strong&gt; Bovine bone scaffolds fabricated with various decellularization protocols viz phosphate buffer saline (PBS), 1% sodium dodecyl sulfate (SDS), and rapid freeze and thaw technique. The manufactured scaffolds were characterized by biomechanical testing, histological staining, and scanning electron microscopy. A 10 mm rabbit radius bone defect was repaired with autograft and SDS treated and rapid freeze and thaw in groups A, B, and C respectively. Healing was evaluated by radiography and histopathology at 0, 30, 60, and 90 days. The grafts were also checked for host tissue reaction and incorporation into the defect. &lt;strong&gt;Results:&lt;/strong&gt; The freeze and thaw group showed complete elimination of all cellular nuclei, regular arrangement of collagen fiber, and no significant difference in tensile strength compared to 1% SDS treated and native groups. The &lt;em&gt;in vivo&lt;/em&gt; radiographic and histopathological study showed that the rapid freeze and thaw group had complete bridging of the bone gap defect with new bone formation and they were immunologically less reactive compared to group B. &lt;strong&gt;Conclusion:&lt;/strong&gt; The &lt;em&gt;in vitro&lt;/em&gt; and &lt;em&gt;in vivo&lt;/em&gt; evaluation of the grafts suggested that freeze and thaw technique was most superior to all other techniques for effective decellularization and augmentation of bone healing with better integration of the graft into the host.</Abstract>
			<OtherAbstract Language="FA">&lt;strong&gt;پیشینه:&lt;/strong&gt; پیوند استخوان یک گزینه درمانی ارجح برای بهبود نقایص بزرگ استخوان دیافیز است و در مدیریت جوش نخوردن، جوش خوردن تاخیری و برداشتن تومور مفید است. &lt;strong&gt;هدف:&lt;/strong&gt; بررسی یک روش سلول‌زدایی از استخوان اسفنجی گاو، برای پیوند زنوژنیک در نقایص استخوان رادیال در خرگوش. &lt;strong&gt;روش کار:&lt;/strong&gt; داربست‌های استخوان گاوی با پروتکل‌های سلول‌زدایی مختلف مانند بافر فسفات سالین (PBS)، سدیم دودسیل سولفات 1% (SDS) و روش انجماد و ذوب سریع ساخته شدند. این داربست‌های ساخته شده با آزمایش‌های بیومکانیکی، رنگ آمیزی بافت‌شناسی و میکروسکوپ الکترونی روبشی مورد شناسایی قرار گرفتند. یک نقص 10 میلی متری در استخوان زند زبرین خرگوش به وسیله اتوگرافت و همچنین داربست‌های استخوانی سلول‌زدا شده با SDS، انجماد و ذوب سریع به ترتیب در گروه‌های A، B، و C ترمیم شد. بهبودی با استفاده از رادیوگرافی و هیستوپاتولوژی در روزهای 0، 30، 60، و 90 مورد ارزیابی قرار گرفت. پیوندها همچنین از نظر واکنش بافتی میزبان و ایجاد نقص بررسی شدند. &lt;strong&gt;نتایج:&lt;/strong&gt; گروه انجماد و ذوب حذف کامل تمام هسته‌های سلولی، آرایش منظم فیبر کلاژن و همچنین عدم تفاوت معنی‌داری در استحکام کششی در مقایسه با گروه تیمار شده با SDS 1% و گروه کنترل را نشان دادند. بررسی رادیوگرافیک درون‌تنی و مطالعات هیستوپاتولوژیک نشان داد که گروه انجماد و ذوب سریع، شکاف استخوانی را با تشکیل استخوان جدید پل زدند و از نظر ایمونولوژیک نسبت به گروه B واکنش کمتری داشتند. &lt;strong&gt;نتیجه‌گیری:&lt;/strong&gt; ارزیابی برون‌تنی و درون‌تنی پیوند‌ها نشان داد که روش انجماد و ذوب، از همه تکنیک‌های دیگر برای سلول‌زدایی مؤثر و تقویت ترمیم استخوان با ادغام بهتر پیوند در میزبان، برتر است.</OtherAbstract>
		<ObjectList>
			<Object Type="keyword">
			<Param Name="value">Bovine bone graft</Param>
			</Object>
			<Object Type="keyword">
			<Param Name="value">Bone defect</Param>
			</Object>
			<Object Type="keyword">
			<Param Name="value">Bone regeneration</Param>
			</Object>
			<Object Type="keyword">
			<Param Name="value">Decellularization</Param>
			</Object>
			<Object Type="keyword">
			<Param Name="value">Rapid freeze and thaw</Param>
			</Object>
		</ObjectList>
<ArchiveCopySource DocType="pdf">https://ijvr.shirazu.ac.ir/article_6897_d78276b1a653bf8bf9e350ff77e138b9.pdf</ArchiveCopySource>
</Article>
</ArticleSet>
