تشخیص مایکوباکتریوم اویوم کمپلکس در سگ‌های مبتلا به لنفادنیت

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: مایکوباکتریوم اویوم کمپلکس (MAC) به بیماری‌های سرکوب کننده سیستم ایمنی انسان از جمله HIV-AIDS مرتبط است و ممکن است یک تهدید مشترک بین انسان و دام باشد. MAC باعث لنفادنوپاتی در کودکان، عفونت تنفسی در بزرگسالان و عفونت عمومی در افراد دارای نقص ایمنی می‌شود. عفونت با مایکوباکتریوم غیر سلی (NTM) در انسان اکنون به طور عمده توسط MAC ایجاد می‌شود. اخیرا اعضای MAC به عنوان ارگانیسم‌های بیماری‌زا برای حیوانات و انسان ظاهر شده‌اند. در حالی که سگ‌ها به طور کلی به عفونت‌های مایکوباکتریایی مقاوم هستند، مواردی از عفونت وجود دارد که منجر به بیماری‌های سیستمیک یا منتشر می‌شود. این ارگانیسم‌ها می‌توانند از طریق تماس دهانی به سگ‌ها منتقل شوند و مدفوع آن‌ها می‌تواند منبع احتمالی عفونت برای صاحبان سگ باشد. توجه به این نکته ضروری است که این بیماری بین انسان و دام مشترک است، به خصوص اگر سگ‌های خانگی آلوده، به مدت طولانی با صاحب خود در تماس باشند. هدف: این مطالعه برای نشان دادن وجود ارگانیسم‌های MAC و سایر مایکوباکتریوم‌ها در سگ‌های مرتبط با موارد لنفادنوپاتی با تاکید ویژه بر لنفادنیت برنامه‌ریزی شد. روش کار: در مجموع 123 نمونه (100 آسپیراسیون غدد لنفاوی، 15 بافت غدد لنفاوی و 8 نمونه خون) از 83 سگ مشکوک به لنفادنیت همراه با گاستروانتریت، عفونت‌های پوستی مزمن، سرکوب سیستم ایمنی، بیماری‌های مزمن ریوی و سایر بیماری‌های مزمن تشخیص داده نشده، مورد بررسی قرار گرفتند. نمونه‌ها برای بررسی سیتولوژیک و میکروسکوپی با رنگ‌آمیزی زیل-نیلسون بررسی شدند. پس از ضد عفونی، نمونه‌های آسپیراسیون و بافت غدد لنفاوی به مدت 8 هفته به محیط کشت میدل بروک 7H11 تلقیح شدند. مواد آسپیره شده نیز به طور مستقیما برای تشخیص مولکولی با روش واکنش زنجیره‌ای پلیمراز آشیانه‌ای سه تایی (nPCR) استفاده شدند. نتایج: مطالعه سیتولوژیک، التهاب پیوگرانولوماتوز بافت غدد لنفاوی را نشان داد. اسمیر از بافت غدد لنفاوی، وجود ارگانیسم‌های اسید فست را نشان داد. از 83 مورد سگ، 8 مورد از نظر مایکوباکتریوم مثبت بودند. از بین آن 8 مورد مثبت، 3 مورد متعلق به MAC و 5 مورد دیگر متعلق به مایکوباکتریوم توبرکولوزیس کمپلکس (کمپلکس MTB) بودند. نتیجه‌گیری: MAC و MTB باکتری‌هایی هستند که کمتر مورد توجه قرار گرفته‌اند و می‌توانند عامل ایجاد لنفادنیت در حیوانات باشند.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Alvarez, J; García, IG; Aranaz, A; Bezos, J; Romero, B; De Juan, L and Domínguez, L (2008). Genetic diversity of Mycobacterium avium isolates recovered from clinical samples and from the environment: molecular characterization for diagnostic purposes. J. Clin. Microbiol., 46: 1246-1251.
Campora, L; Corazza, M; Zullino, C; Ebani, VV and Abramo, F (2011). Mycobacterium avium subspecies hominissuis disseminated infection in a Basset Hound dog. J. Vet. Diagn. Invest., 23: 1083-1087.
Chatterjee, M; Bhattacharya, S; Karak, K and Dastidar, SG (2013). Effects of different methods of decontamination for successful cultivation of Mycobacterium tuberculosis. Indian J. Med. Res., 138: 541-548.
Chen, P; Shi, M; Feng, GD; Liu, JY; Wang, BJ; Shi, XD and Zhao, G (2012). A highly efficient Ziehl-Neelsen stain: identifying de novo intracellular Mycobacterium tuberculosis and improving detection of extracellular M. tuberculosis in cerebrospinal fluid. J. Clin. Microbiol., 50: 1166-1170.
Friend, SCE; Russell, EG; Hartley, WJ and Everist, P (1979). Infection of a dog with Mycobacterium avium serotype II. Vet. Pathol., 16: 381-384.
Gajendra, S; Jha, B; Goel, S; Sahni, T; Sharma, R; Shariq, M and Sachdev, R (2015). Leishman and Giemsa stain: a new reliable staining technique for blood/bone marrow smears. Int. J. Lab. Hematol., 37: 774-782.
Ghielmetti, G and Giger, U (2020). Mycobacterium avium: An emerging pathogen for dog breeds with hereditary immunodeficiencies. Curr. Clin. Microbiol., 7: 67-80. https://doi.org/10.1007/s40588-020-00145-5.
Gopinath, K and Singh, S (2009). Multiplex PCR assay for simultaneous detection and differentiation of Mycobacterium tuberculosis, Mycobacterium avium complexes and other Mycobacterial species directly from clinical specimens. J. Appl. Microbiol., 107: 425-435.
Hackendahl, NC; Mawby, DI; Bemis, DA and Beazley, SL (2004). Putative transmission of Mycobacterium tuberculosis infection from a human to a dog. J. Am. Vet. Med. Assoc., 225: 1573-1577.
Hsiao, PF; Tzen, CY; Chen, HC and Su, HY (2003). Polymerase chain reaction based detection of Mycobacterium tuberculosis in tissues showing granulomatous inflammation without demonstrable acid-fast bacilli. Int. J. Dermatol., 42: 281-286.
Inderlied, CB; Kemper, CA and Bermudez, LE (1993). The Mycobacterium avium complex. Clin. Microbiol. Rev., 6: 266-310.
Kyriakopoulos, AM; Tassios, PT; Matsiota-Bernard, P; Marinis, E; Tsaousidou, S and Legakis, NJ (1997). Characterization to species level of Mycobacterium avium complex strains from human immunodeficiency virus-positive and-negative patients. J. Clin. Microbiol., 35: 3001-3003.
Lam, A; Fostera, D; Martin, P; Spielman, D; Chee, H; Strong, M; Fyfe, J and Malik, R (2012). Treatment of Mycobacterium avium infection in a dog. Aust. Vet. Pract., 42: 234-239.
Laprie, C; Duboy, J; Malik, R and Fyfe, J (2013). Feline cutaneous mycobacteriosis: a review of clinical, pathological and molecular characterization of one case of Mycobacterium microti skin infection and nine cases of feline leprosy syndrome from France and New Caledonia. Vet. Dermatol., 24: 561-569.
Martinho, APV; Franco, MMJ; Ribeiro, MG; Perrotti, IBM; Mangia, SH; Megid, J and Paes, AC (2013). Case Report: Disseminated Mycobacterium tuberculosis infection in a dog. Am. J. Trop. Med. Hyg., 88: 596-600.
Mayskaya, MU; Otten, TF; Ariel, BM; Fedotova, EP; Hunter, RL and Nasyrov, RA (2014). Morphological manifestations of the atypical mycobacteriosis caused by nontuberculous mycobacteria in the HIV infected patients. Ann. Clin. Lab. Sci., 44: 131-133.
Nasr, EA; Marwah, M; Abdel Rahman, M and Shafeek, H (2016). Comparison of modified decontamination methods with culture systems for primary isolation of Mycobacterium bovis from bovine tissues. Benha Vet. Med. J., 30: 59-67.
OIE (2018). Avian tuberculosis. OIE Terrestrial Manual 2018: Office International des Epizooties (OIE), Chapter 3.3.6. Paris, France. PP: 860-868.
Park, H; Kim, C; Park, KH and Chang, CL (2006). Development and evaluation of triplex PCR for direct detection of mycobacteria in respiratory specimens. J. Appl. Microbiol., 100: 161-167.
Ramos, SJ; Woodward, MC; Wakamatsu, N; Bolin, SR and Friedman, ML (2019). Cutaneous manifestation of Mycobacterium avium complex infection in an Australian shepherd dog. Vet. Rec. Case Rep., 7: e000934.
Reddy, VK; Aparna, S; Prasad, CE; Srinivas, A; Triveni, B; Gokhale, S and Moorthy, KK (2008). Mycobacterial culture of fine needle aspirate-A useful tool in diagnosing tuberculous lymphadenitis. Indian J. Med. Microbiol., 26: 259-261.
Sharp, E; Taylor, S and O’Halloran, C (2019). Unusual presentation of canine Mycobacterium avium infection. Vet. Rec., 184: 800.
Shin, SJ; Lee, BS; Koh, WJ; Manning, EJ; Anklam, K; Sreevatsan, S and Collins, MT (2010). Efficient differentiation of Mycobacterium avium complex species and subspecies by use of five-target multiplex PCR. J. Clin. Microbiol., 48: 4057-4062.
Thorel, MF; Huchzermeyer, HF and Michel, AL (2001). Mycobacterium avium and Mycobacterium intracellulare infection in mammals. Rev.Off. Int. Epizoot. 20: 204-218.
Zanini, MS; Moreira, EC; Lopes, MTP; Oliveira, RS; Leao, SC; Fioravanti, RL and Salas, CE (2001). Mycobacterium bovis: polymerase chain reaction identification in bovine lymph node biopsies and genotyping in isolates from Southeast Brazil by spoligotyping and restriction fragment length polymorphism. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 96: 809-813.