سارکوسیستوز در میان گاومیش‌های کشتارگاهی در دلتای نیل، مصر: ارزیابی مورفولوژیک و تایید مولکولی

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: گونه‌های سارکوسیستیس، انگل‌های زئونوز تک یاخته‌ای کوکسیدیائی از گروه آپیکمپلکسا هستند. تنوع زیادی از گونه‌های سارکوسیستیس وجود دارد. برخی از آن‌ها برای انسان، حیوانات اهلی و وحشی بیماری‌زا و خطرناک هستند. گاوها میزبان‌های واسط رایج هستند. آلودگی گوشت با گونه‌های مختلف سارکوسیستیس می‌تواند برای سلامت عمومی خطرناک باشد. هدف: مطالعه حاضر با هدف تعیین شیوع سارکوسیستوز در گاومیش‌های کشتار شده در کشتارگاه‌های شهر تانتا، دلتای نیل، مصر انجام شد. روش کار: بررسی‌های مورفولوژیک، بافت‌شناسی و مطالعه مولکولی انجام شد. در مجموع 517 گاومیش محلی در شهر تانتا مصر کشتار شدند. هر لاشه گاومیش از نظر وجود ماکروسیست‌های سارکوسیستیس به صورت بصری بررسی شد. 50 نمونه بافت حاوی کیست مشکوک با استفاده از تکنیک‌های مختلف شامل بافت شناسی، میکروسکوپ الکترونی عبوری (TEM) و PCR مورد بررسی قرار گرفت. نتایج: با بازرسی چشمی، شیوع کلی سارکوسیستوز مشکوک 5/26% بود. بیشترین میزان عفونت با چشم غیر مسلح از مری و به دنبال آن عضلات اسکلتی و دیافراگم و کمترین آن در زبان ثبت شد. بررسی بافت‌شناسی و TEM نشان داد که کیست‌ها با برادی‌زوئیت‌هایی که توسط سپتوم‌های متعدد جدا شده بودند، پر شده بودند. 100% سارکوسیست‌هایی که به صورت بصری در مری و ماهیچه‌ها تشخیص داده شدند، با PCR تایید شدند، در حالی که فقط 25% از مواردی که در زبان تشخیص داده شد، توسط روش مولکولی تایید گردید. نتیجه‌گیری: این نتایج نشان دهنده شیوع بالای سارکوسیستوز در بین گاومیش‌های مصر است که احتمالا به دلیل آلودگی محیطی گسترده توسط اووسیست‌های سارکوسیستیس است. باید از روش‌های مولکولی برای تایید هویت کیست‌های مشکوک پیش برد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Ahmed, AM; Elshraway, NT and Youssef, AI (2016). Survey on Sarcocystis in bovine carcasses slaughtered at the municipal abattoir of El-Kharga, Egypt. Vet. World. 9: 1461-1465. doi: 10.14202/vetworld.2016.1461-1465.
Ayazian Mavi, S; Teimouri, A; Mohebali, M; Sharifi Yazdi, MK; Shojaee, S; Rezaian, M; Salimi, M and Keshavarz, H (2020). Sarcocystis infection in beef and industrial raw beef burgers from butcheries and retail stores: a molecular microscopic study. Heliyon. 6: e04171.
Bancroft, JB (1990). Theory and practice of histological techniques. 4th Edn., London, UK, Churchill Livingstone. PP: 135-138.
Beyazit, A; Yazicioğlu, Ö and Karaer, Z (2007). The prevalence of ovine Sarcocystis species in Izmir province. Ankara Univ. Vet. Fak. Derg., 54: 111-116.
Choi, TI; Hong, EJ; Ryu, SY; Sim, C; Chae, JS; Kim, HC; Park, J; Choi, KS; Yu, DH; Yoo, JG and Park, BK (2018). Detection and identification of Sarcocystis cruzi (Protozoa: Apicomplexa) by molecular and ultrastructural studies in naturally infected Korean cattle (Bos taurus coreanae) from Daejeon, Korea. Korean J. Parasitol., 56: 121-127.
Dafedar, AM; D’Souza, PE and Puttalakshmamma, G (2008). Prevalence of sarcocystosis in goats slaughtered at an abattoir in Bangalore, Karnataka state. Vet. World. 1: 335-337.
Dong, H; Su, R; Wang, Y; Tong, Z; Zhang, L; Yang, Y and Hu, J (2018). Sarcocystis species in wild and domestic sheep (Ovis ammon and Ovis aries) from China. BMC Vet. Res., 14: 377. doi: 10.1186/s12917-018-1712-9.
Dubey, JP (2015). Foodborne and waterborne zoonotic sarcocystosis. Food and Waterborne Parasitol., 1: 2-11.
Dubey, J; Calero-Bernal, R; Rosenthal, B; Speer, C and Fayer, R (2015a). Sarcocystosis of animals and humans. (2nd Edn.), CRC Press. https://doi.org/10.1201/b19184.
Dubey, JP; van Wilpe, E; Calero-Bernal, R; Verma, SK and Fayer, R (2015b). Sarcocystis heydorni, n. sp. (Apicomplexa: Sarcocystidae) with cattle (Bos taurus) and human (Homo sapiens) cycle. Parasitol. Res., 114: 4143-4147. doi: 10.1007/s00436-015-4645-2.
El-Dakhly, KM; El-Nesr, KA; El-Nahass, ES; Hirata, A; Sakai, H and Yanai, T (2011). Prevalence and distribution patterns of Sarcocystis spp. in buffaloes in Beni-Suef, Egypt. Trop. Anim. Health Prod., 43: 1549-1554. doi: 10.1007/s11250-011-9840-2.
El-Sayad, MH; Farag, H; El-Taweel, H; Fadly, R; Salama, N; Ahmed, AAE and El-Latif, NFA (2021). Cysticercus bovis in cattle slaughtered in North Egypt: Overestimation by the visual inspection method. Vet. World. 14: 155-160.
Elshahawy, IS; Mohammed, E; Gomaa, A and Fawaz, M (2022). Sarcocystis cruzi in Egyptian slaughtered cattle (Bos taurus): epidemiology, morphology and molecular description of the findings. Iran. J. Vet. Res., 23: 337-348. doi:10.22099/IJVR.2022.43498.6363.
Fayer, R (2004). Sarcocystis spp. in human infections. Clin. Microbiol. Rev., 17: 894-902.
Fayer, R; Esposito, DH and Dubey, JP (2015). Human infections with Sarcocystis species. Clin. Microbiol. Rev., 28: 295-311. doi: 10.1128/CMR.00113-14.
Gareh, A; Soliman, M; Saleh, AA; El-Gohary, FA; El-Sherbiny, H; Mohamed, RH and Elmahallawy, EK (2020). Epidemiological and histopathological investigation of Sarcocystis spp. in slaughtered dromedary camels (Camelus dromedarius) in Egypt. Vet. Sci., 7: 162. doi: 10.3390/vetsci7040162.
Hilali, M; El-Seify, M; Zayed, A; El-Morsey, A and Dubey, JP (2011). Sarcocystis dubeyi (Huong and Uggla, 1999) infection in water buffaloes (Bubalus bubalis) from Egypt. J. Parasitol., 97: 527-528. doi: 10.1645/GE-2656.1.
Hoeve-Bakker, BJA; van der Giessen, JWB and Franssen, FFJ (2019). Molecular identification targeting cox1 and 18S genes confirms the high prevalence of Sarcocystis spp. in cattle in the Netherlands. Int. J. Parasitol., 49: 859-866.
Hu, JJ; Liao, JY; Meng, Y; Guo, YM; Chen, XW and Zuo, YX (2011). Identification of Sarcocystis cymruensis in wild Rattus flavipectus and Rattus norvegicus from the people’s Republic of China and its transmission to rats and cats. J. Parasitol., 97: 421-424. doi: 10.1645/GE-2633.1.
Imre, K; Darabus, G; Tirziu, E; Morariu, S; Imre, M; Plutzer, J; Boldea, MV and Morar, A (2019). Sarcocystis spp. in romanian slaughtered cattle: Molecular characterization and epidemiological significance of the findings. Biomed. Res. Int., 4123154. doi: 10.1155/2019/ 4123154.
JyothiSree, C; Venu, R; Samatha, V; Malakondaiah, P and Rayulu, VC (2017). Prevalence and microscopic studies of Sarcocystis infection in naturally infected water buffaloes (Bubalus bubalis) of Andhra Pradesh. J. Parasit. Dis., 41: 476-482.
Koudela, B and Modrý, D (2000). Sarcocystis muris possesses both diheteroxenous and dihomoxenous characters of life cycle. J. Parasitol., 86: 877-879.
Lam, K; Watkins, K and Chan, C (1999). First report of equine protozoal myeloencephalitis in Hong Kong. Equine Vet. Educ., 11: 54-56.
Latif, BM; Al-Delemi, JK; Mohammed, BS; Al-Bayati, SM and Al-Amiry, AM (1999). Prevalence of Sarcocystis spp. in meat-producing animals in Iraq. Vet. Parasitol., 84: 85-90.
Lindsay, DS and Dubey, JP (2020). Neosporosis, toxoplasmosis, and sarcocystosis in ruminants: An update. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract., 36: 205-222.
Marques, SM; Barbosa, J; Quadros, R and Pilati, C (2018). Occurrence of Sarcocystis cruzi in cattle in the state of Santa Catarina, Brazil. Int. J. Infect. Dis., 73: 303. doi: 10.1016/j.ijid.2018.04.4105.
Metwally, AM; Abd Ellah, MR; Al-Hosary, AA and Omar, MA (2014). Microscopical and serological studies on Sarcocystis infection with the first report of S. cruzi in buffaloes (Bubalus bubalis) in Assiut, Egypt. J. Parasit. Dis., 38: 378-382. doi: 10.1007/s12639-013-0257-x.
Moré, G; Abrahamovich, P; Jurado, S; Bacigalupe, D; Marin, J; Rambeaud, M; Venturini, L and Venturini, MC (2011). Prevalence of Sarcocystis spp. in Argentinean cattle. Vet. Parasitol., 177: 162-165.
More, G; Basso, W; Bacigalupe, D; Venturini, MC and Venturini, L (2008). Diagnosis of Sarcocystis cruzi, Neospora caninum, and Toxoplasma gondii infections in cattle. Parasitol. Res., 102: 671-675.
Morsy, K; Abdel-Ghaffar, F; Bin Dajem, S; Abdel-Gaber, R and El Gazar, F (2018). First molecular characterization and morphological aspects of Sarcocystis fusiformis infecting water buffalo Bubalus bubalis in Egypt. Acta Parasitol., 63: 333-345. doi: 10.1515/ap-2018-0038.
Morsy, K; Saleh, A; Al-Ghamdi, A; Abdel-Ghaffar, F; Al-Rasheid, K; Bashtar, AR; Al Quraishy, S and Mehlhorn, Hl (2011). Prevalence pattern and biology of Sarcocystis capracanis infection in Egyptian goats: a light and ultrastructural study. Vet. Parasitol., 181: 75-82.
Mounika, K; Chennuru, S; Ravipati, V; Tumati, SR and Krovvidi, S (2018). Studies on prevalence and histomorphology of Sarcocystis species infecting cattle in Andhra Pradesh, India. J. Parasitic Dis., 42: 77-80. doi: 10.1007/s12639-017-0968-5.
Nourani, H; Matin, S; Nouri, A and Azizi, H (2010). Prevalence of thin-walled Sarcocystis cruzi and thick-walled Sarcocystis hirsuta or Sarcocystis hominis from cattle in Iran. Trop. Anim. Health Prod., 42: 1225-1227.
Prakas, P and Butkauskas, D (2012). Protozoan parasites from genus Sarcocystis and their investigations in Lithuania. Ekologija, 58: 45-58. doi: 10.6001/ekologija. v58i1.2349.
Ras, R; Gouda, AA; AbdelMageed, MA; El Damaty, HM and Anter, RG (2021). Prevalence and molecular identification of Sarcocystis spp. infecting water buffaloes (Bubalus bubalis) in Sharkia province, Egypt. Egypt. Vet. Med. Soc. J., 17: 1-19.
Rubiola, S; Civera, T; Ferroglio, E; Zanet, S; Zaccaria, T; Brossa, S; Cipriani, R and Chiesa, F (2020). Molecular differentiation of cattle Sarcocystis spp. by multiplex PCR targeting 18S and COI genes following identification of Sarcocystis hominis in human stool samples. Food Waterborne Parasitol., 18: 00074. doi: 10.1016/j.fawpar. 2020.e00074.
Saleh, M; Spotin, A; Rostamian, M and Adami, M (2022). Prevalence and molecular assessment of Sarcocystis infection in livestock in northeast Iran. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis., 80: 101738. doi: 10.1016/j.cimid. 2021.101738.
Savini, G; Dunsmore, J; Robertson, I and Seneviratna, P (1992). The epidemiology of Sarcocystis spp. in cattle of Western Australia. Epidemiol. Infect., 108: 107-113.
Slesak, G; Schafer, J; Langeheinecke, A and Tappe, D (2015). Prolonged clinical course of muscular sarcocystosis
and effectiveness of cotrimoxazole among travelers to Tioman Island, Malaysia, 2011-2014. Clin. Infect. Dis., 60: 329. doi: 10.1093/cid/ciu791.
Tenter, AM (1995). Current research on Sarcocystis species of domestic animals. Int. J. Parasitol., 25: 1311-1330.
Tinak, SG (2009). Prévalence de la Sarcosporidiose dans les Muscles des Petits Ruminants aux Abattoirs de Dakar (Senegal). University Cheikh Anta Diop, Dakar, Senegal. P: 103.
World Health Organization (2005). WHO/FAO/OIE guidelines for the surveillance, prevention, and control of taeniosis/cysticercosis: Paris: World Organisation for Animal Health.