اثر پروستاگلاندین‌های E2 و F2α بر آپوپتوز سلول‌های گرانولوزا در فولیکول‌های تخمدان‌ بز .

نوع مقاله : مقاله کامل

نویسندگان

چکیده

پیشینه: بز یک حیوان چند منظوره است که گوشت، شیر، پوست، نخ و کود تولید می‌کند و از اینرو نقش مهمی در تامین درآمد تکمیلی و معیشت تعداد زیادی از دامداران فقیر و کارگران فاقد زمین، در مناطق روستایی هندوستان دارد. هدف: مطالعه حاضر با هدف بررسی تاثیر      برون تنی پروستاگلاندین‌های E2 (PGE2) و F (PGF) بر سلول‌های گرانولوزای تخمدان‌ یک بز انجام شد. روش کار: فولیکول‌های سالم، اندکی آترتیک و آترتیک آنترال بز با قطری در محدوده 3 تا 8 میلی متر با PGE2 و PGF (μg/ml 0/1) در کنار گروه شاهد به مدت 24 ساعت کشت داده شدند. بررسی هیستومورفولوژی به منظور مطالعه تغییرات ایجاد شده توسط پروستاگلاندین‌ها در سلول‌های گرانولوزا، در هر 3 دسته فولیکول انجام شد. از رنگ آمیزی اکریدین اورنج (AO) و متیلن بلو (MB) برای بررسی شاخص آپوپتوتیک در هر سه دسته فولیکول‌ها استفاده شد و داده‌های به دست آمده به وسیله آزمون ANOVA و تست تعقیبی دانکن مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفتند. نتایج: پروستاگلاندین E2 اثرات مثبت و PGF اثرات منفی بر نجات سلول‌های گرانولوزا از آپوپتوز داشتند. فولیکول‌های تیمار شده با PGE2 کاهش شاخصه‌های آپوپتوز را در سلول‌های گرانولوزا نشان دادند در حالی که PGF سبب افزایش شاخصه‌های آپوپتوتیک شد. نتیجه‌گیری: مطالعه حاضر نشان داد که زنده مانی سلول‌های گرانولوزا در شرایط آزمایشگاهی وابسته به تامین مداوم فاکتورهای بقا و رشد است و ساخت پروستاگلاندین‌های سری E، یک مرحله مهم و اساسی در مهار آپوپتوز سلول‌های گرانولوزا است در حالی که پروستاگلاندین‌های سری F سبب القای آپوپتوز می‌شوند.

کلیدواژه‌ها


Ainsworth, L; Baker, RD and Armstrong, DT (1975). Pre-ovulatory changes in follicular fluid prostaglandin F levels in swine. Prostaglandins. 9: 915-925.
Ainsworth, L; Tsang, BK; Downey, BR; Baker, RD; Marcus, GJ and Armstrong, DT (1979). Effects of indomethacin on ovulation and luteal function in gilts. Bio. Reprodn., 21: 401-411.
Armstrong, DT (1981). Prostaglandins and follicular functions. Reproduction. 62: 283-291.
Armstrong, DT and Grinwich, DL (1972). Blockade of spontaneous and LH-induced ovulation in rats by indomethacin, an inhibitor of prostaglandin biosynthesis. Prostaglandins. 1: 21-28.
Armstrong, DT; Moon, YS and Zamecnik, J (1974). Evidence for a role of ovarian prostaglandins in ovulation. In: Mougdal, NR (Ed.), Gonadotropins and gonadal function. (1st Edn.), Elsevier Inc., PP: 343-356.
Bauminger, S and Lindner, HR (1975). Periovulatory changes in ovarian prostaglandin formation and their hormonal control in the rat. Prostaglandins. 9: 737-751.
Bowolaksono, A; Nishimura, R; Hojo, T; Sakumoto, R; Acosta, TJ and Okuda, K (2008). Anti-apoptotic roles of prostaglandin E2 and F2alpha in bovine luteal steroidogenic cells. Bio. Reprodn., 79: 310-317.
Broaddus, VC; Yang, L; Scavo, LM; Ernst, JD and Boylan, AM (1996). Asbestos induces apoptosis of human and rabbit pleural mesothelial cells via reactive oxygen species. J. Clinic. Investig., 98: 2050-2059.
Dave, U; Shousha, S and Westaby, D (2001). Methylene blue staining: is it really useful in Barrett’s esophagus? Gastro. Endosco., 53: 333-335.
Goff, AK and Armstrong, DT (1983). Changes in responsiveness of rat granulosa cells to prostaglandin E2 and follicle-stimulating hormone during culture. Cana. J. Physio. Pharmacol., 61: 608-613.
Goff, AK; Zamecnik, J; Ali, M and Armstrong, DT (1978). Prostaglandin I2 stimulation of granulosa cell cyclic AMP production. Prostaglandins. 15: 875-879.
Grinwich, DL; Kennedy, TG and Armstrong, DT (1972). Dissociation of ovulatory and steroidogenic actions of luteinizing hormone in rabbits with indomethacin, an inhibitor of prostaglandin biosynthesis. Prostaglandins. 1: 89-96.
Hillier, SG; Zeleznik, AJ and Ross, GT (1978). Independence of steroidogenic capacity and luteinizing hormone receptor induction in developing granulosa cells. Endocrinology. 102: 937-946.
Lau, IF; Saksena, SK and Chang, MC (1974). Prostaglandins F and ovulation in mice. Reproduction. 40: 467-469.
Li, J and Tsang, BK (1995). Prostaglandins mediate the stimulation of deoxyribonucleic acid synthesis by transforming growth factor α in hen granulosa cells during ovarian follicular development. Bio. Reprodn., 52: 1050-1058.
Maia, JrH; Barbosa, I and Coutinho, EM (1978). Inhibition of ovulation in marmoset monkeys by indomethacin. Fert. Ster., 29: 565-570.
Manchanda, R; Kim, JM and Tsang, BK (2001). Role of prostaglandins in the suppression of apoptosis in hen granulosa cells by transforming growth factor alpha. Reproduction. 122: 91-101.
Nafisi, S; Saboury, AA; Keramat, N; Neault, JF and Tajmir-Riahi, HA (2007). Stability and structural features of DNA intercalation with ethidium bromide, acridine orange and methylene blue. J. Mol. Struct., 827: 35-43.
O’Grady, JP; Caldwell, BV; Auletta, FJ and Speroff, L (1972). The effects of an inhibitor of prostaglandin synthesis (indomethacin) on ovulation, pregnancy, and pseudopregnancy in the rabbit. Prostaglandins. 1: 97-106.
Orczyk, GP and Behrman, HR (1972). Ovulation blockade by aspirin or indomethacin-in vivo evidence for a role of prostaglandin in gonadotrophin secretion. Prostaglandins. 1: 3-20.
Pearse, AGE (1968). Histochemistry, theoretical and applied: theoretical and applied. 3rd Edn., Boston, USA.
Sharma, RK and Bhardwaj, JK (2009). Ultrastructural characterization of apoptotic granulosa cells in caprine ovary. J. Micro., 236: 236-242.
Stacey, NE and Pandey, S (1975). Effects of indomethacin and prostaglandins on ovulation of goldfish. Prostaglandins. 9: 597-607.
Triebwasser, WF; Clark, MR; LeMaire, WJ and Marsh, JM (1978). Localization and in vitro synthesis of prostaglandins in components of rabbit preovulatory Graafian follicles. Prostaglandins. 16: 621-632.
Tsang, BK; Ainsworth, L; Downey, BR and Armstrong, DT (1979). Pre-ovulatory changes in cyclic AMP and prostaglandin concentrations in follicular fluid of gilts. Prostaglandins. 17: 141-148.
Wallach, EE; de la Cruz, A; Hunt, J; Wright, KH and Stevens, VC (1975). The effect of indomethacin on HMG-HCG induced ovulation in the rhesus monkey. Prostaglandins. 9: 645-658.
Yadav, VK; Lakshmi, G and Medhamurthy, R (2005). Prostaglandin F2α-mediated activation of apoptotic signaling cascades in the corpus luteum during apoptosis involvement of caspase-activated DNase. J. Bio. Chem., 280: 10357-10367.
Yang, NS; Marsh, JM and LeMaire, WJ (1974). Post ovulatory changes in the concentration of prostaglandins in rabbit Graafian follicles. Prostaglandins. 6: 37-44.